Welche Modifizierungen am Protokoll können vorgenommen werden, um die Hybrid-Capture-Verfahren zu optimieren?

Folgendes kann modifiziert werden, um das Hybrid Capture zu optimieren:

  • Hybridisierungszeit – Beginnen Sie mit 2 Stunden, wie empfohlen, und ändern Sie die Dauer dann auf zwischen 30 Minuten und 4 Stunden.
  • Fast Wash Buffer 1 Temperatur – Beginnen Sie mit 65 °C, zwischen 63–66 °C anpassen:

Hybrid_Capture_2

Hybrid_Capture

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 


Haben Sie noch Fragen? Kontaktieren Sie uns.

Was ist meine erwartete endgültige Library-Ausbeute?

Die erwartete endgültige Ausbeute der Library liegt zwischen 50–75 ng/ul. Die Ausbeute hängt von der Qualität des Ausgangsinputs ab.


Haben Sie noch Fragen? Kontaktieren Sie uns.

Gibt es interne Kontrollen, um die Methylierungskonversion zu testen?

In diesem Kit sind CpG Methylated pUC19 DNA und Unmethylated Lambda DNA enthalten. Diese Kontrollen können verwendet werden, um die Effizienz der enzymatischen Umwandlung während der Libraryvorbereitung zu bestimmen.

HINWEIS: Interne Kontrollen sollten nicht ein Bestandteil des Capture-Workflows sein, außer wenn kontrollspezifische Sonden dem Anreicherungspanel hinzugefügt werden.


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Was ist die empfohlene Anzahl von Amplifikationszyklen nach dem Capture-Verfahren?

Siehe Tabelle: 

PanelgrößeBenutzerdefiniertes PanelBenutzerdefiniertes Methylierungs-Panel
>100 Mb58
50–100 Mb79
25–50 Mb810
10–25 Mb811
2,5–10 Mb912
1–2,5 Mb913
500–1.000 kb1114
100–500 kb1315
50–100 kb1416
<50 kb1517

 


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Was ist die minimale/maximale DNA-Eingabe für die Libraryvorbereitung?

Wir empfehlen mindestens 10 bis 20 ng qualitativ hochwertige DNA und maximal 200 ng.


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Kann ich Libraries im Capture multiplexen? Wenn ja, welche Librarymenge wird benötigt?

Ja. Multiplexing bis zu 8-Plex ist unterstützt. Wir empfehlen die Verwendung von 200 ng der Library bei Single-Plex und 1500 ng (oder jeweils 187,5 ng) für ein 8-Plex-Capture.


Haben Sie noch Fragen? Kontaktieren Sie uns.

Soll ich den Methylierungs-Enhancer verwenden?

Wenn diese Reagenzien verwendet werden, hat dies auf die Hybridselektionsmetriken keinen Einfluss. Sie reduzieren Off-Target auf unterschiedliche Weise, je nach den benutzerdefinierten Zielregionen des Methylierungs-Panels und den Methylierungszuständen der hinzugefügten genomischen DNA. Bei einigen benutzerdefinierten Panels kann die Off-Target-Reduktion bis zu 50 % betragen.

 

Methylierungs-Enhancer_1

Methylierungs-Enhancer_2


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Welche Fragmentierungsmethode kann ich in diesem Workflow verwenden?

Twist unterstützt die mechanische Fragmentierung für diese Anwendung nur beim Aufbau von Libraries, die einer Methylierungskonversion unterzogen werden sollen.


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Was ist die empfohlene Fragmentgröße?

200 bis 300 bp


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Kann ich den Standard-Hybridisierungs-Workflow zur Anreicherung verwenden?

Nein. Hybrid Capture muss mit dem Twist Fast Hybridization System durchgeführt werden.


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Was ist die endgültige Library-Größe?

350 bis 450 bp


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Welche Modifizierungen am Protokoll können vorgenommen werden, um die Hybrid-Capture-Verfahren zu optimieren?

Folgendes kann modifiziert werden, um das Hybrid Capture zu optimieren:

  • Hybridisierungszeit – Beginnen Sie mit 2 Stunden, wie empfohlen, und ändern Sie die Dauer dann auf zwischen 30 Minuten und 4 Stunden.
  • Fast Wash Buffer 1 Temperatur – Beginnen Sie mit 65 °C, zwischen 63–66 °C anpassen:

Hybrid_Capture_2

Hybrid_Capture

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 


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Was ist meine erwartete endgültige Library-Ausbeute?

Die erwartete endgültige Ausbeute der Library liegt zwischen 50–75 ng/ul. Die Ausbeute hängt von der Qualität des Ausgangsinputs ab.


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Gibt es interne Kontrollen, um die Methylierungskonversion zu testen?

In diesem Kit sind CpG Methylated pUC19 DNA und Unmethylated Lambda DNA enthalten. Diese Kontrollen können verwendet werden, um die Effizienz der enzymatischen Umwandlung während der Libraryvorbereitung zu bestimmen.

HINWEIS: Interne Kontrollen sollten nicht ein Bestandteil des Capture-Workflows sein, außer wenn kontrollspezifische Sonden dem Anreicherungspanel hinzugefügt werden.


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Was ist die empfohlene Anzahl von Amplifikationszyklen nach dem Capture-Verfahren?

Siehe Tabelle: 

PanelgrößeBenutzerdefiniertes PanelBenutzerdefiniertes Methylierungs-Panel
>100 Mb58
50–100 Mb79
25–50 Mb810
10–25 Mb811
2,5–10 Mb912
1–2,5 Mb913
500–1.000 kb1114
100–500 kb1315
50–100 kb1416
<50 kb1517

 


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Was ist die minimale/maximale DNA-Eingabe für die Libraryvorbereitung?

Wir empfehlen mindestens 10 bis 20 ng qualitativ hochwertige DNA und maximal 200 ng.


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Kann ich Libraries im Capture multiplexen? Wenn ja, welche Librarymenge wird benötigt?

Ja. Multiplexing bis zu 8-Plex ist unterstützt. Wir empfehlen die Verwendung von 200 ng der Library bei Single-Plex und 1500 ng (oder jeweils 187,5 ng) für ein 8-Plex-Capture.


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Soll ich den Methylierungs-Enhancer verwenden?

Wenn diese Reagenzien verwendet werden, hat dies auf die Hybridselektionsmetriken keinen Einfluss. Sie reduzieren Off-Target auf unterschiedliche Weise, je nach den benutzerdefinierten Zielregionen des Methylierungs-Panels und den Methylierungszuständen der hinzugefügten genomischen DNA. Bei einigen benutzerdefinierten Panels kann die Off-Target-Reduktion bis zu 50 % betragen.

 

Methylierungs-Enhancer_1

Methylierungs-Enhancer_2


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Welche Fragmentierungsmethode kann ich in diesem Workflow verwenden?

Twist unterstützt die mechanische Fragmentierung für diese Anwendung nur beim Aufbau von Libraries, die einer Methylierungskonversion unterzogen werden sollen.


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Was ist die empfohlene Fragmentgröße?

200 bis 300 bp


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Kann ich den Standard-Hybridisierungs-Workflow zur Anreicherung verwenden?

Nein. Hybrid Capture muss mit dem Twist Fast Hybridization System durchgeführt werden.


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Was ist die endgültige Library-Größe?

350 bis 450 bp


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