Twist Bioscience HQ
681 Gateway Blvd
South San Francisco, CA 94080, USA
Methylierung
- Welche Modifizierungen am Protokoll können vorgenommen werden, um die Hybrid-Capture-Verfahren zu optimieren?
- Was ist meine erwartete endgültige Library-Ausbeute?
- Gibt es interne Kontrollen, um die Methylierungskonversion zu testen?
- Was ist die empfohlene Anzahl von Amplifikationszyklen nach dem Capture-Verfahren?
- Was ist die minimale/maximale DNA-Eingabe für die Libraryvorbereitung?
- Kann ich Libraries im Capture multiplexen? Wenn ja, welche Librarymenge wird benötigt?
- Soll ich den Methylierungs-Enhancer verwenden?
- Welche Fragmentierungsmethode kann ich in diesem Workflow verwenden?
- Was ist die empfohlene Fragmentgröße?
- Kann ich den Standard-Hybridisierungs-Workflow zur Anreicherung verwenden?
- Was ist die endgültige Library-Größe?
Welche Modifizierungen am Protokoll können vorgenommen werden, um die Hybrid-Capture-Verfahren zu optimieren?
Folgendes kann modifiziert werden, um das Hybrid Capture zu optimieren:
- Hybridisierungszeit – Beginnen Sie mit 2 Stunden, wie empfohlen, und ändern Sie die Dauer dann auf zwischen 30 Minuten und 4 Stunden.
- Fast Wash Buffer 1 Temperatur – Beginnen Sie mit 65 °C, zwischen 63–66 °C anpassen:


Haben Sie noch Fragen? Kontaktieren Sie uns.
Was ist meine erwartete endgültige Library-Ausbeute?
Die erwartete endgültige Ausbeute der Library liegt zwischen 50–75 ng/ul. Die Ausbeute hängt von der Qualität des Ausgangsinputs ab.
Haben Sie noch Fragen? Kontaktieren Sie uns.
Gibt es interne Kontrollen, um die Methylierungskonversion zu testen?
In diesem Kit sind CpG Methylated pUC19 DNA und Unmethylated Lambda DNA enthalten. Diese Kontrollen können verwendet werden, um die Effizienz der enzymatischen Umwandlung während der Libraryvorbereitung zu bestimmen.
HINWEIS: Interne Kontrollen sollten nicht ein Bestandteil des Capture-Workflows sein, außer wenn kontrollspezifische Sonden dem Anreicherungspanel hinzugefügt werden.
Haben Sie noch Fragen? Kontaktieren Sie uns.
Was ist die empfohlene Anzahl von Amplifikationszyklen nach dem Capture-Verfahren?
Siehe Tabelle:
| Panelgröße | Benutzerdefiniertes Panel | Benutzerdefiniertes Methylierungs-Panel |
| >100 Mb | 5 | 8 |
| 50–100 Mb | 7 | 9 |
| 25–50 Mb | 8 | 10 |
| 10–25 Mb | 8 | 11 |
| 2,5–10 Mb | 9 | 12 |
| 1–2,5 Mb | 9 | 13 |
| 500–1.000 kb | 11 | 14 |
| 100–500 kb | 13 | 15 |
| 50–100 kb | 14 | 16 |
| <50 kb | 15 | 17 |
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Was ist die minimale/maximale DNA-Eingabe für die Libraryvorbereitung?
Wir empfehlen mindestens 10 bis 20 ng qualitativ hochwertige DNA und maximal 200 ng.
Haben Sie noch Fragen? Kontaktieren Sie uns.
Kann ich Libraries im Capture multiplexen? Wenn ja, welche Librarymenge wird benötigt?
Ja. Multiplexing bis zu 8-Plex ist unterstützt. Wir empfehlen die Verwendung von 200 ng der Library bei Single-Plex und 1500 ng (oder jeweils 187,5 ng) für ein 8-Plex-Capture.
Haben Sie noch Fragen? Kontaktieren Sie uns.
Soll ich den Methylierungs-Enhancer verwenden?
Wenn diese Reagenzien verwendet werden, hat dies auf die Hybridselektionsmetriken keinen Einfluss. Sie reduzieren Off-Target auf unterschiedliche Weise, je nach den benutzerdefinierten Zielregionen des Methylierungs-Panels und den Methylierungszuständen der hinzugefügten genomischen DNA. Bei einigen benutzerdefinierten Panels kann die Off-Target-Reduktion bis zu 50 % betragen.


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Welche Fragmentierungsmethode kann ich in diesem Workflow verwenden?
Twist unterstützt die mechanische Fragmentierung für diese Anwendung nur beim Aufbau von Libraries, die einer Methylierungskonversion unterzogen werden sollen.
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Kann ich den Standard-Hybridisierungs-Workflow zur Anreicherung verwenden?
Nein. Hybrid Capture muss mit dem Twist Fast Hybridization System durchgeführt werden.
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Welche Modifizierungen am Protokoll können vorgenommen werden, um die Hybrid-Capture-Verfahren zu optimieren?
Folgendes kann modifiziert werden, um das Hybrid Capture zu optimieren:
- Hybridisierungszeit – Beginnen Sie mit 2 Stunden, wie empfohlen, und ändern Sie die Dauer dann auf zwischen 30 Minuten und 4 Stunden.
- Fast Wash Buffer 1 Temperatur – Beginnen Sie mit 65 °C, zwischen 63–66 °C anpassen:


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Was ist meine erwartete endgültige Library-Ausbeute?
Die erwartete endgültige Ausbeute der Library liegt zwischen 50–75 ng/ul. Die Ausbeute hängt von der Qualität des Ausgangsinputs ab.
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Gibt es interne Kontrollen, um die Methylierungskonversion zu testen?
In diesem Kit sind CpG Methylated pUC19 DNA und Unmethylated Lambda DNA enthalten. Diese Kontrollen können verwendet werden, um die Effizienz der enzymatischen Umwandlung während der Libraryvorbereitung zu bestimmen.
HINWEIS: Interne Kontrollen sollten nicht ein Bestandteil des Capture-Workflows sein, außer wenn kontrollspezifische Sonden dem Anreicherungspanel hinzugefügt werden.
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Was ist die empfohlene Anzahl von Amplifikationszyklen nach dem Capture-Verfahren?
Siehe Tabelle:
| Panelgröße | Benutzerdefiniertes Panel | Benutzerdefiniertes Methylierungs-Panel |
| >100 Mb | 5 | 8 |
| 50–100 Mb | 7 | 9 |
| 25–50 Mb | 8 | 10 |
| 10–25 Mb | 8 | 11 |
| 2,5–10 Mb | 9 | 12 |
| 1–2,5 Mb | 9 | 13 |
| 500–1.000 kb | 11 | 14 |
| 100–500 kb | 13 | 15 |
| 50–100 kb | 14 | 16 |
| <50 kb | 15 | 17 |
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Was ist die minimale/maximale DNA-Eingabe für die Libraryvorbereitung?
Wir empfehlen mindestens 10 bis 20 ng qualitativ hochwertige DNA und maximal 200 ng.
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Kann ich Libraries im Capture multiplexen? Wenn ja, welche Librarymenge wird benötigt?
Ja. Multiplexing bis zu 8-Plex ist unterstützt. Wir empfehlen die Verwendung von 200 ng der Library bei Single-Plex und 1500 ng (oder jeweils 187,5 ng) für ein 8-Plex-Capture.
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Soll ich den Methylierungs-Enhancer verwenden?
Wenn diese Reagenzien verwendet werden, hat dies auf die Hybridselektionsmetriken keinen Einfluss. Sie reduzieren Off-Target auf unterschiedliche Weise, je nach den benutzerdefinierten Zielregionen des Methylierungs-Panels und den Methylierungszuständen der hinzugefügten genomischen DNA. Bei einigen benutzerdefinierten Panels kann die Off-Target-Reduktion bis zu 50 % betragen.


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Welche Fragmentierungsmethode kann ich in diesem Workflow verwenden?
Twist unterstützt die mechanische Fragmentierung für diese Anwendung nur beim Aufbau von Libraries, die einer Methylierungskonversion unterzogen werden sollen.
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Kann ich den Standard-Hybridisierungs-Workflow zur Anreicherung verwenden?
Nein. Hybrid Capture muss mit dem Twist Fast Hybridization System durchgeführt werden.
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