¿Qué modificaciones se pueden realizar en el protocolo para optimizar la captura híbrida?

Lo siguientes pueden modificarse para optimizar una captura híbrida:

  • Tiempo de hibridación: empezar con 2 horas según se recomienda y modificar a entre 30 minutos y 4 horas.
  • Temperatura del amortiguador 1 de lavado rápido: empezar con 65 °C y ajustar a entre 63-66 °C

Hybrid_Capture_2

Hybrid_Capture

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 


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¿Cuál es el rendimiento final esperado de mi biblioteca?

El rendimiento final esperado de las bibliotecas es de 50-75 ng/ul. Este rendimiento dependerá de la calidad del suministro inicial.


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¿Existen controles internos para probar la conversión de metilación?

El kit incluye ADN pUC19 con islas CpG metiladas y ADN lambda no metilado. Estos controles pueden utilizarse para determinar la eficiencia de la conversión enzimática durante la preparación de bibliotecas.

NOTA: Los controles internos no deben incluirse en el flujo de trabajo de captura a menos que se añadan sondas específicas de los controles al panel de enriquecimiento.


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¿Cuál es el número recomendado de ciclos de amplificación posteriores a la captura?

Consulte la tabla: 

Tamaño de panelPanel personalizadoPanel de metilación personalizada
>100 Mb58
50-100 Mb79
25-50 Mb810
10-25 Mb811
2,5-10 Mb912
1-2,5 Mb913
500-1000 kb1114
100-500 kb1315
50-100 kb1416
<50 kb1517

 


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¿Cuál es el mínimo/máximo de entrada de ADN para la preparación de la biblioteca?

Se recomienda un mínimo de 10-20 ng de ADN de alta calidad y un máximo de 200 ng.


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¿Puedo multiplexar bibliotecas en la captura? Si es así, ¿cuál es la cantidad de biblioteca necesaria?

Sí, se admite la multiplexación hasta un 8 plex. Recomendamos usar 200 ng de biblioteca para un único plex y 1500 ng (o 187,5 ng cada uno) para una captura de 8 plex.


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¿Debo usar el potenciador de metilación?

No hay detrimento en ninguna métrica de selección híbrida al usar este reactivo. Reduce los casos fuera de diana de forma variable en función de las regiones objetivo del panel de metilación personalizado y los estados de metilación del ADN genómico suministrado. También puede reducir en un 50 % los casos fuera de diana en algunos paneles personalizados.

 

Methylation Enhancer_1

Methylation Enhancer_2


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¿Qué método de fragmentación puedo utilizar en este flujo de trabajo?

Twist solo admite la fragmentación mecánica para esta aplicación durante la creación de las bibliotecas para la conversión de metilación.


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¿Cuál es el tamaño de inserción recomendado?

De 200 a 300 pb


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¿Puedo utilizar el flujo de trabajo de hibridación estándar para el enriquecimiento?

No. La captura híbrida debe realizarse con el sistema de hibridación rápida Twist.


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¿Cuál es el tamaño final de la biblioteca?

De 350 a 450 pb


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¿Qué modificaciones se pueden realizar en el protocolo para optimizar la captura híbrida?

Lo siguientes pueden modificarse para optimizar una captura híbrida:

  • Tiempo de hibridación: empezar con 2 horas según se recomienda y modificar a entre 30 minutos y 4 horas.
  • Temperatura del amortiguador 1 de lavado rápido: empezar con 65 °C y ajustar a entre 63-66 °C

Hybrid_Capture_2

Hybrid_Capture

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 


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¿Cuál es el rendimiento final esperado de mi biblioteca?

El rendimiento final esperado de las bibliotecas es de 50-75 ng/ul. Este rendimiento dependerá de la calidad del suministro inicial.


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¿Existen controles internos para probar la conversión de metilación?

El kit incluye ADN pUC19 con islas CpG metiladas y ADN lambda no metilado. Estos controles pueden utilizarse para determinar la eficiencia de la conversión enzimática durante la preparación de bibliotecas.

NOTA: Los controles internos no deben incluirse en el flujo de trabajo de captura a menos que se añadan sondas específicas de los controles al panel de enriquecimiento.


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¿Cuál es el número recomendado de ciclos de amplificación posteriores a la captura?

Consulte la tabla: 

Tamaño de panelPanel personalizadoPanel de metilación personalizada
>100 Mb58
50-100 Mb79
25-50 Mb810
10-25 Mb811
2,5-10 Mb912
1-2,5 Mb913
500-1000 kb1114
100-500 kb1315
50-100 kb1416
<50 kb1517

 


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¿Cuál es el mínimo/máximo de entrada de ADN para la preparación de la biblioteca?

Se recomienda un mínimo de 10-20 ng de ADN de alta calidad y un máximo de 200 ng.


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¿Puedo multiplexar bibliotecas en la captura? Si es así, ¿cuál es la cantidad de biblioteca necesaria?

Sí, se admite la multiplexación hasta un 8 plex. Recomendamos usar 200 ng de biblioteca para un único plex y 1500 ng (o 187,5 ng cada uno) para una captura de 8 plex.


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¿Debo usar el potenciador de metilación?

No hay detrimento en ninguna métrica de selección híbrida al usar este reactivo. Reduce los casos fuera de diana de forma variable en función de las regiones objetivo del panel de metilación personalizado y los estados de metilación del ADN genómico suministrado. También puede reducir en un 50 % los casos fuera de diana en algunos paneles personalizados.

 

Methylation Enhancer_1

Methylation Enhancer_2


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¿Qué método de fragmentación puedo utilizar en este flujo de trabajo?

Twist solo admite la fragmentación mecánica para esta aplicación durante la creación de las bibliotecas para la conversión de metilación.


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¿Cuál es el tamaño de inserción recomendado?

De 200 a 300 pb


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¿Puedo utilizar el flujo de trabajo de hibridación estándar para el enriquecimiento?

No. La captura híbrida debe realizarse con el sistema de hibridación rápida Twist.


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¿Cuál es el tamaño final de la biblioteca?

De 350 a 450 pb


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