¿Recomienda agrupar este control con la muestra del paciente después de la preparación de la biblioteca, antes de la NGS?

Una vez preparado en una biblioteca con índices, no habrá problema en combinar este control con muestras de pacientes para una secuenciación simultánea.


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¿Están las 456 variantes en un tubo o en subconjuntos?

Las 456 variantes están almacenadas en un tubo.

 


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¿De qué está hecho su ADNcl de base?

La similitud del ADNlc de fondo de tipo salvaje Twist se deriva de líneas celulares y se trata con nuestro método patentado para que sea muy similar al perfil de fragmentación del ADNlc natural, que se caracteriza por un pico mononucleosómico pronunciado y un pico dinucleosómico secundario.


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¿Cómo se diseña la lista de ADNcl/variantes?

Twist investigó la documentación hasta realizar una lista de variantes seleccionadas, asociadas al cáncer y clínicamente pertinentes (es decir, sobre las que se puede actuar), y utilizó la base de datos COSMIC como referencia, donde hay disponibles entradas coincidentes. Incluye muchas variantes prevalentes en tumores sólidos de adultos. Las 456 variantes se dan en 85 genes únicos. Twist también anota por separado el conjunto de variantes clínicamente pertinentes (>140 variantes).

 

La configuración de variantes y su referencia precisa y secuencia alternativa se indican en el sitio web de Twist.

 


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La variante (COSM214499) es siempre alta en el 0 % de los resultados de control de calidad de la NGS, ¿por qué?

Esta deleción se produce en el gen ATM en un contexto genómico con 10 T consecutivas. Estas T consecutivas hacen que el locus sea una secuencia “deslizada”, donde la ADN polimerasa que replica una copia del genoma puede presentar un deslizamiento de la cadena de plantilla con respecto a la cadena que se está sintetizando, lo que provoca una INDEL.

 

Este mismo efecto es muy probable que ocurra por el mismo mecanismo cuando una PCR polimesara copia la secuencia durante la PCR de preparación de bibliotecas. Así, es especialmente probable que este locus forme espontáneamente la secuencia de la variante debido al ciclo de PCR durante la preparación ordinaria de bibliotecas.

 

Cuando el alelo no está presente, cualquier muestra genómica humana (incluido el estándar de referencia pantumoral) mostrará una VAF elevada para esta mutación debido al error de PCR. (En la VAF pantumoral del 0 %, se muestra a una VAF superior al 99,8 % de otros sitios de variantes en el estándar). Así, el ruido de fondo es mayor debido al contexto genómico, lo que significa que el límite de blancos (LoB) de esta variante es probablemente mayor que el de otros loci debido al contexto de la secuencia.

 

Cuando el alelo está presente, la frecuencia alélica verdadera se añadirá “sobre” el nivel de ruido del locus, lo que significa que probablemente esta variante tendrá un nivel de detección (LoD) más alto que otros sitios de variantes.

 

El uso de adaptadores UMI (como los adaptadores UMI Twist) y el colapso de consenso o colapso dúplex puede ayudar a reducir el ruido en este locus debido al error de PCR en la preparación de las bibliotecas.

 


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¿No puede encontrar indel u otras variantes difíciles de detectar?

El estándar contiene muchas variantes difíciles de detectar, lo que incluye variantes estructurales e INDEL que van de 1 pb a 30 pb. La detección de las variantes individuales puede depender de qué alineador y configuración de alineación esté usando el cliente. Estas variantes difíciles de detectar son para clientes experimentados que utilizan su línea. Así que solo hay que entenderlo. Los SNV y las INDEL pequeñas (por ejemplo, 5 pb o menores) son más fáciles de detectar para los clientes.


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¿Son estos oligonucleótidos de control, ARN, lo que hay en sus componentes?

Los controles para ADNlc Twist son ADN bicatenario. Hay una mezcla de moléculas de “ADNlc” sintético diseñadas e impresas con tecnología Twist y añadidas al ADNlc de fondo para formar cada nivel de VAF específico.


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Para el CC de la NGS, ¿se utiliza la secuencia de captura objetivo para las 456 variantes o se utiliza una secuencia del genoma completo?

Twist realiza una secuenciación de exomas completa para el ADNlc de fondo y utiliza una captura de objetivo en el 5 % del material, además de una ddPCR en la VAF intermedia.


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¿Cuál es la estructura molecular de los extremos 3′ y 5′?

Los fragmentos de las variantes son moléculas de ADN bicatenario con extremos romos.

Twist ha comprobado que el material fuera un estándar apto en protocolos de preparación de bibliotecas de reparación de extremos y adición de cola de A (ERAT) sin fragmentación, así como en los protocolos de amplicones como ddPCR y qPCR. El rendimiento del estándar de referencia pantumoral v2 es similar al del v1 y a cualquier otra entrada de ADNbc en la preparación de bibliotecas.

 


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¿Cómo realiza el control de calidad en los estándares de referencia?

Twist ejecuta la NGS de enriquecimiento del objetivo en la VAF del 0 % y el 5 % para garantizar la detección y no detección, respectivamente, en todos los sitios de variantes. Asimismo, se confirman seis sitios en todos los niveles de VAF a través de ddPCR.


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¿Qué reactivos (por ejemplo, preparación de biblioteca) utiliza para el flujo de trabajo de las biopsias líquidas?

El ADN libre circulante se genera en un proceso biológico muy específico que da lugar a un perfil de longitud de fragmento característico. Por lo tanto, recomendamos preparar una biblioteca que no cambie el perfil de tamaño de ninguna manera: utilizando el “Kit de preparación de bibliotecas de fragmentación mecánica Twist” sin ningún tratamiento de fragmentación adicional. El tamaño de las inserciones de nuestra biblioteca es magnífico cuando utilizamos ese método. Hemos utilizado ampliamente los adaptadores UMI Twist en las muestras de ADNlc y funcionan muy bien para el consenso dúplex y para obtener buenas evaluaciones de las tasas de mutación.


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¿Cuáles son las configuraciones del kit de los estándares de ADNlc?

El kit completo contiene 7. Si un tubo individual es de 3 ug, es un único tubo. La configuración de 300 ng de 2 tubos incluye 2 tubos.

 

Número de referencia

Descripción

107576

Conjunto estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2, kit de 300 ng

107577

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 0 % (WT), 3 µg

107578

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 0,1 %, 3 µg

107579

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 0,25 %, 3 µg

107580

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 0,5 %, 3 µg

107581

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 1 %, 3 µg

107582

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 2 %, 3 µg

107583

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 5 %, 3 µg

107584

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 0 %, 600 ng

107585

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 0,1 %, 600 ng

107586

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 0,25 %, 600 ng

107587

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 0,5 %, 600 ng

107588

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 1 %, 600 ng

107589

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 2 %, 600 ng

107590

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 5 %, 600 ng


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¿Qué recomienda como entrada inicial?

Twist recomienda empezar por 30 ng de entrada inicial. El intervalo típico para una prueba de biopsias líquidas es de 20-30 ng.


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¿Se confirmaron también las mutaciones en los estándares mediante NGS, como con la PCR digital como dice el documento?

Las 456 variantes están confirmadas por NGS (tanto para una VAL del 0 % como del 5 %), y el 0,1 %, el 0,25 %, el 0,5 %, el 1 % y el 2 % se generan a partir de la dilución del 0 % y del 5 %. Hemos seleccionado un conjunto de seis variantes representativas y pertinentes en las VAF del 0 % y el 5 % para ddPCR, que muestra formulaciones cuantitativas y una dilución continua en serie.


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¿Recomendaciones para la dilución de los controles?

Twist recomienda utilizar TE con bajo contenido en EDTA, que es Tris 10 mM pH 8, EDTA 0,1 mM. Si debe evitarse el EDTA por compatibilidad con los pasos posteriores, puede utilizarse el tampón de elución Qiagen (Tris-HCl 10 mM, pH 8).


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¿Es su suministro de ADNcl de base limitado?

El ADNlc Twist se deriva de una línea celular inmortalizada, lo que nos permite crear grandes lotes de producción con coherencia en cuanto a genotipos y rendimiento de un lote a otro.


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¿Podría haber también algunos “contaminantes” de la mutación procedentes del ADN de fondo?

El ADN no amplificado de alta fidelidad de ADNlc de fondo Twist se deriva de nuestro proceso de fragmentación patentado y hemos observado una tasa de mutación extremadamente baja en comparación con el material de la competencia.


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¿Recomienda agrupar este control con la muestra del paciente después de la preparación de la biblioteca, antes de la NGS?

Una vez preparado en una biblioteca con índices, no habrá problema en combinar este control con muestras de pacientes para una secuenciación simultánea.


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¿Están las 456 variantes en un tubo o en subconjuntos?

Las 456 variantes están almacenadas en un tubo.

 


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¿De qué está hecho su ADNcl de base?

La similitud del ADNlc de fondo de tipo salvaje Twist se deriva de líneas celulares y se trata con nuestro método patentado para que sea muy similar al perfil de fragmentación del ADNlc natural, que se caracteriza por un pico mononucleosómico pronunciado y un pico dinucleosómico secundario.


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¿Cómo se diseña la lista de ADNcl/variantes?

Twist investigó la documentación hasta realizar una lista de variantes seleccionadas, asociadas al cáncer y clínicamente pertinentes (es decir, sobre las que se puede actuar), y utilizó la base de datos COSMIC como referencia, donde hay disponibles entradas coincidentes. Incluye muchas variantes prevalentes en tumores sólidos de adultos. Las 456 variantes se dan en 85 genes únicos. Twist también anota por separado el conjunto de variantes clínicamente pertinentes (>140 variantes).

 

La configuración de variantes y su referencia precisa y secuencia alternativa se indican en el sitio web de Twist.

 


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La variante (COSM214499) es siempre alta en el 0 % de los resultados de control de calidad de la NGS, ¿por qué?

Esta deleción se produce en el gen ATM en un contexto genómico con 10 T consecutivas. Estas T consecutivas hacen que el locus sea una secuencia “deslizada”, donde la ADN polimerasa que replica una copia del genoma puede presentar un deslizamiento de la cadena de plantilla con respecto a la cadena que se está sintetizando, lo que provoca una INDEL.

 

Este mismo efecto es muy probable que ocurra por el mismo mecanismo cuando una PCR polimesara copia la secuencia durante la PCR de preparación de bibliotecas. Así, es especialmente probable que este locus forme espontáneamente la secuencia de la variante debido al ciclo de PCR durante la preparación ordinaria de bibliotecas.

 

Cuando el alelo no está presente, cualquier muestra genómica humana (incluido el estándar de referencia pantumoral) mostrará una VAF elevada para esta mutación debido al error de PCR. (En la VAF pantumoral del 0 %, se muestra a una VAF superior al 99,8 % de otros sitios de variantes en el estándar). Así, el ruido de fondo es mayor debido al contexto genómico, lo que significa que el límite de blancos (LoB) de esta variante es probablemente mayor que el de otros loci debido al contexto de la secuencia.

 

Cuando el alelo está presente, la frecuencia alélica verdadera se añadirá “sobre” el nivel de ruido del locus, lo que significa que probablemente esta variante tendrá un nivel de detección (LoD) más alto que otros sitios de variantes.

 

El uso de adaptadores UMI (como los adaptadores UMI Twist) y el colapso de consenso o colapso dúplex puede ayudar a reducir el ruido en este locus debido al error de PCR en la preparación de las bibliotecas.

 


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El estándar contiene muchas variantes difíciles de detectar, lo que incluye variantes estructurales e INDEL que van de 1 pb a 30 pb. La detección de las variantes individuales puede depender de qué alineador y configuración de alineación esté usando el cliente. Estas variantes difíciles de detectar son para clientes experimentados que utilizan su línea. Así que solo hay que entenderlo. Los SNV y las INDEL pequeñas (por ejemplo, 5 pb o menores) son más fáciles de detectar para los clientes.


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¿Son estos oligonucleótidos de control, ARN, lo que hay en sus componentes?

Los controles para ADNlc Twist son ADN bicatenario. Hay una mezcla de moléculas de “ADNlc” sintético diseñadas e impresas con tecnología Twist y añadidas al ADNlc de fondo para formar cada nivel de VAF específico.


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Para el CC de la NGS, ¿se utiliza la secuencia de captura objetivo para las 456 variantes o se utiliza una secuencia del genoma completo?

Twist realiza una secuenciación de exomas completa para el ADNlc de fondo y utiliza una captura de objetivo en el 5 % del material, además de una ddPCR en la VAF intermedia.


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¿Cuál es la estructura molecular de los extremos 3′ y 5′?

Los fragmentos de las variantes son moléculas de ADN bicatenario con extremos romos.

Twist ha comprobado que el material fuera un estándar apto en protocolos de preparación de bibliotecas de reparación de extremos y adición de cola de A (ERAT) sin fragmentación, así como en los protocolos de amplicones como ddPCR y qPCR. El rendimiento del estándar de referencia pantumoral v2 es similar al del v1 y a cualquier otra entrada de ADNbc en la preparación de bibliotecas.

 


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¿Cómo realiza el control de calidad en los estándares de referencia?

Twist ejecuta la NGS de enriquecimiento del objetivo en la VAF del 0 % y el 5 % para garantizar la detección y no detección, respectivamente, en todos los sitios de variantes. Asimismo, se confirman seis sitios en todos los niveles de VAF a través de ddPCR.


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¿Qué reactivos (por ejemplo, preparación de biblioteca) utiliza para el flujo de trabajo de las biopsias líquidas?

El ADN libre circulante se genera en un proceso biológico muy específico que da lugar a un perfil de longitud de fragmento característico. Por lo tanto, recomendamos preparar una biblioteca que no cambie el perfil de tamaño de ninguna manera: utilizando el “Kit de preparación de bibliotecas de fragmentación mecánica Twist” sin ningún tratamiento de fragmentación adicional. El tamaño de las inserciones de nuestra biblioteca es magnífico cuando utilizamos ese método. Hemos utilizado ampliamente los adaptadores UMI Twist en las muestras de ADNlc y funcionan muy bien para el consenso dúplex y para obtener buenas evaluaciones de las tasas de mutación.


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¿Cuáles son las configuraciones del kit de los estándares de ADNlc?

El kit completo contiene 7. Si un tubo individual es de 3 ug, es un único tubo. La configuración de 300 ng de 2 tubos incluye 2 tubos.

 

Número de referencia

Descripción

107576

Conjunto estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2, kit de 300 ng

107577

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 0 % (WT), 3 µg

107578

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 0,1 %, 3 µg

107579

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 0,25 %, 3 µg

107580

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 0,5 %, 3 µg

107581

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 1 %, 3 µg

107582

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 2 %, 3 µg

107583

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 5 %, 3 µg

107584

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 0 %, 600 ng

107585

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 0,1 %, 600 ng

107586

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 0,25 %, 600 ng

107587

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 0,5 %, 600 ng

107588

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 1 %, 600 ng

107589

Estándar de referencia pantumoral para ADNlc Twist v2 VAF 2 %, 600 ng

107590

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Twist recomienda empezar por 30 ng de entrada inicial. El intervalo típico para una prueba de biopsias líquidas es de 20-30 ng.


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Las 456 variantes están confirmadas por NGS (tanto para una VAL del 0 % como del 5 %), y el 0,1 %, el 0,25 %, el 0,5 %, el 1 % y el 2 % se generan a partir de la dilución del 0 % y del 5 %. Hemos seleccionado un conjunto de seis variantes representativas y pertinentes en las VAF del 0 % y el 5 % para ddPCR, que muestra formulaciones cuantitativas y una dilución continua en serie.


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¿Recomendaciones para la dilución de los controles?

Twist recomienda utilizar TE con bajo contenido en EDTA, que es Tris 10 mM pH 8, EDTA 0,1 mM. Si debe evitarse el EDTA por compatibilidad con los pasos posteriores, puede utilizarse el tampón de elución Qiagen (Tris-HCl 10 mM, pH 8).


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¿Es su suministro de ADNcl de base limitado?

El ADNlc Twist se deriva de una línea celular inmortalizada, lo que nos permite crear grandes lotes de producción con coherencia en cuanto a genotipos y rendimiento de un lote a otro.


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¿Podría haber también algunos “contaminantes” de la mutación procedentes del ADN de fondo?

El ADN no amplificado de alta fidelidad de ADNlc de fondo Twist se deriva de nuestro proceso de fragmentación patentado y hemos observado una tasa de mutación extremadamente baja en comparación con el material de la competencia.


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