Intégration de vecteur personnalisé
Envoyez-nous vos propres vecteurs pour que nous les intégrions et recevez un ADN séquencé parfait en quelques jours
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Les vecteurs de clonage Twist ne contiennent pas de sites de restriction à proximité des points d’insertion. Si vous avez l’intention d’utiliser des enzymes de restriction pour extraire votre insert, assurez-vous d’ajouter les sites pertinents à votre séquence d’insert. Nous recommandons de toujours examiner les constructions que vous êtes sur le point de commander avec la fonction « Télécharger les séquences »
Vecteur de clonage à nombre élevé de copies avec origine de réplication pMB1. Les amorces Forward et Reverse de Twist flanquent le site d’insertion pour une amplification facile du produit. Les sites d’amorçage avant et arrière M13 sont présents pour le séquençage de l’insert.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| pTwist Amp | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Vecteur de clonage à nombre élevé de copies avec origine de réplication pMB1. Les amorces Forward et Reverse de Twist flanquent le site d’insertion pour une amplification facile du produit. Les sites d’amorçage avant et arrière M13 sont présents pour le séquençage de l’insert.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| pTwist Chlor | 0 - 7000 kbp |
Chloramphenicol
élevé
Vecteur de clonage de copie moyenne avec origine de réplication p15A. Les amorces Forward et Reverse de Twist flanquent le site d’insertion pour une amplification facile du produit. Les sites d’amorçage avant et arrière M13 sont présents pour le séquençage de l’insert.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| pTwist Amp MC | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
moyen
Vecteur de clonage de copie moyenne avec origine de réplication p15A. Les amorces Forward et Reverse de Twist flanquent le site d’insertion pour une amplification facile du produit. Les sites d’amorçage avant et arrière M13 sont présents pour le séquençage de l’insert.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| pTwist Chlor MC | 0 - 7000 kbp |
Chloramphenicol
moyen
Vecteur de clonage de copie moyenne avec origine de réplication p15A. Les amorces Forward et Reverse de Twist flanquent le site d’insertion pour une amplification facile du produit. Les sites d’amorçage avant et arrière M13 sont présents pour le séquençage de l’insert.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| pTwist Kan MC | 0 - 7000 kbp |
Kanamycin
moyen
pTwist ENTR permet le clonage rapide d’un ou plusieurs gènes dans pratiquement n’importe quel système d’expression protéique en utilisant le système de clonage Gateway™. Une fois que vous disposez d’un clone d’entrée, vous pouvez recombiner votre gène d’intérêt dans une variété de vecteurs d’expression adaptés à une utilisation dans la technologie Gateway®. Le produit de synthèse de gène est cloné entre les sites de recombinaison attL1 et attL2. Si l’utilisation prévue de ce clone est l’expression mammifère, nous recommandons pTwist ENTR Kozak pour des niveaux d’expression mammifère améliorés. Ce vecteur contient une origine de réplication pMB1 pour des rendements plasmidiques élevés et des sites d’amorçage avant et arrière M13 pour le séquençage des inserts. Gateway™ & Gateway® Technology are registered trademarks of Thermo Fisher Scientific.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| pTwist ENTR | 0 - 7000 kbp |
Kanamycin
élevé
pTwist ENTR Kozak permet le clonage rapide de gènes dans pratiquement n’importe quel vecteur d’expression protéique en utilisant le système de clonage Gateway™. pTwist ENTR Kozak est destiné à une expression améliorée des mammifères. Le site de clonage est conçu dans le cadre de lecture approprié pour fonctionner avec les étiquettes de fusion terminales N et C dans les vecteurs d’expression de mammifères passerelles les plus populaires. Le produit de synthèse de gène est cloné entre les sites de recombinaison attL1 et attL2 après le site Kozak minimal pour une expression améliorée. Ce vecteur contient une origine de réplication pMB1 pour des rendements plasmidiques élevés et des sites d’amorçage avant et arrière M13 pour le séquençage des inserts. Gateway™ & Gateway® Technology are registered trademarks of Thermo Fisher Scientific.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| pTwist ENTR Kozak | 0 - 7000 kbp |
Kanamycin
élevé
Version mise à jour du vecteur de clonage High Copy de Twist avec l’origine de réplication pMB1 et le marqueur de résistance à la kanamycine. Les amorces Forward et Reverse de Twist flanquent le site d’insertion pour une amplification facile du produit. Les sites d’amorçage avant et arrière M13 sont présents pour le séquençage de l’insert.
Améliorations :| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| pTwist Kan HC v2 | 0 - 7000 kbp |
Kanamycin
élevé
pUC19 est un vecteur de clonage à haut nombre de copies couramment utilisé avec une résistance à l’ampicilline développé par Joachim Messing, et al. à l’Université de Californie. Il contient le gène LacZ et plusieurs sites de clonage. Sites d’insertion :
| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| HindIII_XbaI | 0 - 7000 kbp |
| HindIII_SphI | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Vecteur d’expression piloté par CMV pour l’expression transitoire dans les cellules de mammifères. Ce vecteur contient une cassette de résistance à l’ampicilline pour la croissance et le maintien dans E. coli. Ce vecteur a une taille globale réduite en raison de l’absence d’un marqueur de sélection de mammifère. La terminaison transcriptionnelle se fait via un signal de polyadénylation SV40 3’ du site de clonage multiple.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| NotI_NheI | 0 - 7000 kbp |
| NotI_BamHI | 0 - 7000 kbp |
| HindIII_NheI | 0 - 7000 kbp |
| HindIII_BamHI | 0 - 7000 kbp |
| EcoRI_NheI | 0 - 7000 kbp |
| EcoRI_BamHI | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Un vecteur d’expression piloté par CMV pour une expression transitoire de haut niveau dans les cellules de mammifères qui contient une cassette de résistance à l’ampicilline pour la croissance et le maintien dans E. coli. L’OriP pilote la réplication du plasmide dans les cellules HEK-293 transformées par EBNA, facilitant des niveaux plus élevés d’expression des protéines. La terminaison transcriptionnelle est réalisée via un signal de polyadénylation SV40 3’ du site de clonage multiple.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| NotI_NheI | 0 - 7000 kbp |
| HindIII_NheI | 0 - 7000 kbp |
| HindIII_BamHI | 0 - 7000 kbp |
| EcoRI_NheI | 0 - 7000 kbp |
| EcoRI_BamHI | 0 - 7000 kbp |
| NotI_BamHI | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Vecteur de transcription piloté par l’ARN polymérase T7 pour l’expression dans E. coli. Le vecteur, qui ne possède pas de site de liaison au ribosome ni de codon de démarrage ATG, est conçu pour l’expression de protéines à partir de signaux de traduction transportés par l’ADN cloné. Le vecteur comprend : Séquence His•Tag® C-terminale répresseur lac / opérateur lac pour inhiber la transcription dans E. coli. L’expression peut être induite par l’ajout de lactose ou d’isopropyl-bêta-D-thiogalactopyranoside (IPTG). Production de virions contenant de l'ADN simple brin correspondant au brin codant lors de la co-transfection avec un phage auxiliaire.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| BglII_XhoI | 0 - 7000 kbp |
| EcoRI_NotI | 0 - 7000 kbp |
| BamHI_HindIII | 0 - 7000 kbp |
| BamHI_XhoI | 0 - 7000 kbp |
| SacI_HindIII | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
moyen
Vecteur de transcription piloté par l’ARN polymérase T7 pour l’expression dans E. coli. Le vecteur, qui ne possède pas de site de liaison au ribosome ni de codon de démarrage ATG, est conçu pour l’expression de protéines à partir de signaux de traduction transportés par l’ADN cloné. Le vecteur comprend : Séquence His•Tag® C-terminale répresseur lac / opérateur lac pour inhiber la transcription dans E. coli. L’expression peut être induite par l’ajout de lactose ou d’isopropyl-bêta-D-thiogalactopyranoside (IPTG). Production de virions contenant de l'ADN simple brin correspondant au brin codant lors de la co-transfection avec un phage auxiliaire.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| BamHI_XhoI | 0 - 7000 kbp |
| EcoRI_NotI | 0 - 7000 kbp |
| BglII_XhoI | 0 - 7000 kbp |
| BamHI_HindIII | 0 - 7000 kbp |
| SacI_HindIII | 0 - 7000 kbp |
Kanamycin
moyen
Vecteur de transcription/translation pour l’expression des protéines dans E. coli. Le vecteur, qui contient le site de liaison du ribosome et le codon de démarrage ATG, est conçu pour l’expression de protéines à partir de signaux de transation transportés par l’ADN cloné. Le cadre de lecture de translation par rapport au site de clonage GGATCC BamH I est GGA. Le vecteur comprend : Séquences His•Tag® N-terminales et C-terminales facultatives Séquence T7•Tag® interne Site de clivage de la thrombine répresseur lac / opérateur lac pour inhiber la transcription dans E. coli. L’expression peut être induite par l’ajout de lactose ou d’isopropyl-bêta-D-thiogalactopyranoside (IPTG). Production de virions contenant de l'ADN simple brin correspondant au brin codant lors de la co-transfection avec un phage auxiliaire.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| NcoI_XhoI_no_HIS_no_thrombin | 0 - 7000 kbp |
| SacI_HindIII | 0 - 7000 kbp |
| BamHI_XhoI | 0 - 7000 kbp |
| NdeI_XhoI | 0 - 7000 kbp |
| BamHI_HindIII | 0 - 7000 kbp |
| EcoRI_NotI | 0 - 7000 kbp |
Kanamycin
moyen
Vecteur de transcription/translation pour l’expression des protéines dans E. coli. Le vecteur, qui contient le site de liaison du ribosome et le codon de démarrage ATG, est conçu pour l’expression de protéines à partir de signaux de transation transportés par l’ADN cloné. Le cadre de lecture de translation relatif au site de clonage GGATCC BamH I est GAT. Caractéristiques du vecteur : Séquence N-terminale S•Tag™ Séquence C-terminale His•Tag® Site de clivage de la thrombine répresseur lac / opérateur lac pour inhiber la transcription dans E. coli. L’expression peut être induite par l’ajout de lactose ou d’isopropyl-bêta-D-thiogalactopyranoside (IPTG). Production de virions contenant de l'ADN simple brin correspondant au brin codant lors de la co-transfection avec un phage auxiliaire.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| EcoRI_NotI | 0 - 7000 kbp |
| BamHI_HindIII | 0 - 7000 kbp |
| BamHI_XhoI | 0 - 7000 kbp |
| SacI_HindIII | 0 - 7000 kbp |
| NdeI_XhoI | 0 - 7000 kbp |
Kanamycin
moyen
Un plasmide d’expression de lentivirus qui peut être utilisé pour l’intégration stable de gènes dans des cellules, qu’elles se divisent ou non. Le plasmide est basé sur le squelette du lentivirus pCCL couramment utilisé. Le promoteur SFFV est présent pour piloter l’expression du transgène. Il s’agit d’un lentivirus de troisième génération qui peut être conditionné à l’aide d’un mélange de conditionnement de deuxième ou de troisième génération.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| BamHI_SpeI | 0 - 7000 kbp |
| BamHI_XhoI | 0 - 7000 kbp |
| MluI_SpeI | 0 - 7000 kbp |
| SpeI_XhoI | 0 - 7000 kbp |
| MluI_XhoI | 0 - 7000 kbp |
| BamHI_MluI | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Un plasmide d’expression de lentivirus qui peut être utilisé pour l’intégration stable de gènes dans des cellules, qu’elles se divisent ou non. Le plasmide est basé sur le squelette du lentivirus pCCL couramment utilisé. Le promoteur SFFV est présent pour piloter l’expression du transgène. Le plasmide contient également un gène permettant l’antibiotique puromycine, dont l’expression est pilotée par le promoteur SSFV via un IRES EMCV. Il s’agit d’un lentivirus de troisième génération qui peut être conditionné à l’aide d’un mélange de conditionnement de deuxième ou de troisième génération.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| BamHI_MluI | 0 - 7000 kbp |
| BamHI_XhoI | 0 - 7000 kbp |
| SpeI_XhoI | 0 - 7000 kbp |
| MluI_XhoI | 0 - 7000 kbp |
| BamHI_SpeI | 0 - 7000 kbp |
| MluI_SpeI | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Vecteur d’expression piloté par CMV pour l’expression transitoire dans les cellules de mammifères. En plus du promoteur CMV, ce vecteur contient un intron de bêta-globine qui a démontré sa capacité à améliorer l’expression des gènes. Ce vecteur contient une cassette de résistance à l’ampicilline pour la croissance et le maintien dans E. coli. Ce vecteur a une taille globale réduite en raison de l’absence d’un marqueur de sélection de mammifère. La terminaison transcriptionnelle se fait via un signal de polyadénylation SV40 3’ du site de clonage multiple.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| NotI_NheI | 0 - 7000 kbp |
| EcoRI_NheI | 0 - 7000 kbp |
| EcoRI_XbaI | 0 - 7000 kbp |
| XhoI_XbaI | 0 - 7000 kbp |
| XhoI_NheI | 0 - 7000 kbp |
| NotI_XbaI | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Vecteur d’expression mammifère transitoire de niveau moyen piloté par le promoteur du facteur d’élongation humain alpha (EF1 Alpha). Ce vecteur contient une cassette de résistance à l’ampicilline pour la croissance et le maintien dans E. coli. Ce vecteur a une taille globale réduite en raison de l’absence d’un marqueur de sélection de mammifère. La terminaison transcriptionnelle se fait via un signal de polyadénylation SV40 3’ du site de clonage multiple.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| HindIII_NheI | 0 - 7000 kbp |
| NotI_BamHI | 0 - 7000 kbp |
| EcoRI_NheI | 0 - 7000 kbp |
| HindIII_BamHI | 0 - 7000 kbp |
| NotI_NheI | 0 - 7000 kbp |
| EcoRI_BamHI | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Vecteur d’expression mammifère de niveau moyen piloté par le promoteur du facteur d’élongation humain Alpha (EF1 Alpha) pour la génération de lignées cellulaires stables via la sélection de puromycine. Ce vecteur contient une cassette de résistance à l’ampicilline pour la croissance et le maintien d’E. coli. La terminaison transcriptionnelle se fait via un signal de polyadénylation SV40 3’ du site de clonage multiple.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| EcoRI_BamHI | 0 - 7000 kbp |
| NotI_BamHI | 0 - 7000 kbp |
| HindIII_NheI | 0 - 7000 kbp |
| EcoRI_NheI | 0 - 7000 kbp |
| NotI_NheI | 0 - 7000 kbp |
| HindIII_BamHI | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Un vecteur d’expression piloté par CMV pour une expression transitoire de haut niveau dans les cellules de mammifères qui contient une cassette de résistance à l’ampicilline pour la croissance et le maintien dans E. coli. Ce vecteur contient un marqueur de sélection de mammifères hygromycine pour la génération de clones de mammifères stables. La terminaison transcriptionnelle est réalisée via un signal de polyadénylation SV40 3’ du site de clonage multiple.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| EcoRI_NheI | 0 - 7000 kbp |
| NotI_NheI | 0 - 7000 kbp |
| NotI_XbaI | 0 - 7000 kbp |
| NotI_BamHI | 0 - 7000 kbp |
| EcoRI_BamHI | 0 - 7000 kbp |
| HIndIII_NheI | 0 - 7000 kbp |
| HindIII_BamHI | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Un vecteur d’expression piloté par CMV pour une expression transitoire de haut niveau dans les cellules de mammifères qui contient une cassette de résistance à l’ampicilline pour la croissance et le maintien dans E. coli. Ce vecteur contient un marqueur de sélection de mammifères Puromycine pour la génération de clones de mammifères stables. La terminaison transcriptionnelle est réalisée via un signal de polyadénylation SV40 3’ du site de clonage multiple.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| EcoRI_NheI | 0 - 7000 kbp |
| NotI_BamHI | 0 - 7000 kbp |
| HIndIII_BamHI | 0 - 7000 kbp |
| EcoRI_BamHI | 0 - 7000 kbp |
| HindIII_NheI | 0 - 7000 kbp |
| NotI_NheI | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Vecteur d’expression piloté par CMV pour l’expression transitoire dans les cellules de mammifères conçu pour fournir des niveaux exceptionnellement élevés d’expression transgénique. Il peut être utilisé dans des cellules adaptées à la suspension et adhérentes pour l'expression transitoire de protéines. Le vecteur peut également être utilisé comme plasmide d’expression sélectionnable G-418 pour l’ingénierie de lignées cellulaires stables. En plus du promoteur CMV, ce vecteur contient du WPRE qui a démontré sa capacité à améliorer l’expression transgénique.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| NotI_BamHI | 0 - 7000 kbp |
| EcoRI_BamHI | 0 - 7000 kbp |
| HindIII_BamHI | 0 - 7000 kbp |
| NotI_XbaI | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
pTwist CMV hIgL2 est un vecteur d’expression qui contient la région constante de la chaîne légère lambda 2 humaine. Lorsque ce vecteur est co-transfecté dans des cellules de mammifères avec la région variable de la chaîne lourde clonée dans pTwist hIgG1/2/4 S228P, l’anticorps d’intérêt est produit.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| Lambda_TAG | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
pTwist CMV hIgG2 est un vecteur d’expression qui contient la région constante de l’isotype IgG2 humain, qui a une fonction effectrice minimale. Lorsqu’il est co-transfecté dans des cellules de mammifères avec la région variable de la chaîne légère clonée dans pTwist hIgK ou hIgL2, l’anticorps d’intérêt est produit.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| HuIgG2Fc_TAG | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
pTwist CMV hIgG1-Fc est un vecteur d’expression qui contient un lieur G4S fusionné à la région CH2 et CH3 de l’isotype IgG1 humain.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| VHHFc_TAG | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
pTwist CMV hIgK est un vecteur d’expression qui contient la région constante de la chaîne légère kappa humaine. Lorsque ce vecteur est co-transfecté dans des cellules de mammifères avec la région variable de la chaîne lourde clonée dans pTwist hIgG1/2/4 S228P, l’anticorps d’intérêt est produit.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| Kappa_TAG | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
pTwist CMV hIgG1 est un vecteur d’expression qui contient la région constante de l’isotype IgG1 humain. Lorsqu’il est co-transfecté dans des cellules de mammifères avec la région variable de la chaîne légère clonée dans pTwist hIgK ou hIgL2, l’anticorps d’intérêt est produit.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| HuIgG1Fc_TAG | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Vecteur d’expression piloté par CMV pour l’expression transitoire dans les cellules de mammifères conçu pour fournir des niveaux exceptionnellement élevés d’expression transgénique. Ce vecteur peut être utilisé dans des cellules adaptées à la suspension et adhérentes pour l’expression transitoire de protéines et peut également être utilisé comme plasmide d’expression sélectionnable G-418 pour l’ingénierie de lignées cellulaires stables. En plus du promoteur CMV, ce vecteur contient un intron bêta-globine et un WPRE qui ont démontré leur capacité à améliorer l’expression transgénique. Pour l’expression IgG, ce vecteur est disponible pour une expression sur toute la longueur ou sur une seule chaîne dans laquelle les régions Fc souhaitées diffèrent de l’offre de vecteurs IgG disponibles. Cela permet des régions de séquence Fc personnalisables telles que les régions Fc de souris ou de lapin.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| NotI_XbaI | 0 - 7000 kbp |
| XhoI_ClaI | 0 - 7000 kbp |
| EcoRI_XbaI | 0 - 7000 kbp |
| XhoI_XbaI | 0 - 7000 kbp |
| NotI_ClaI | 0 - 7000 kbp |
| EcoRI_ClaI | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
pTwist CMV hIgG4 S228P est un vecteur d’expression qui contient la région constante de l’isotype IgG4 S228P humain. La mutation S228P réduit l’échange de bras Fab en stabilisant les disulfures dans la charnière centrale des molécules IgG4. Lorsqu’il est co-transfecté dans des cellules de mammifères avec la région variable de la chaîne légère clonée dans pTwist hIgK ou hIgL2, l’anticorps d’intérêt est produit.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| HuIgG4_TAG | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
pTwist CMV hIgG2-Fc est un vecteur d'expression qui contient un lieur G4S fusionné à la région CH2 et CH3 de l'isotype IgG2 humain, qui a une fonction effectrice minimale.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| NotI_GS-hIgG2-FcFusionTA | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Vecteur de transcription piloté par l’ARN polymérase T7 pour l’expression dans E. coli. Le vecteur, dépourvu de codon de démarrage et de codon d’arrêt ATG, est conçu pour l’expression de protéines à partir de signaux de traduction transportés par l’ADN cloné. Le vecteur comprend : répresseur lac / opérateur lac pour inhiber la transcription dans E. coli. L’expression peut être induite par l’ajout de lactose ou d’isopropyl-bêta-D-thiogalactopyranoside (IPTG). Production de virions contenant de l'ADN simple brin correspondant au brin codant lors de la co-transfection avec un phage auxiliaire. Sites d’insertion : T7-lacO-RBS. Ne contient pas ATG ni de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande. T7-lacO (sans RBS). Ne contient pas de RBS, d’ATG et de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande. Promoteur personnalisé-RBS. Ne contient pas de promoteur, de RBS, d’ATG et de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| T7-lacO-RBS | 0 - 7000 kbp |
| T7-lacO (no RBS) | 0 - 7000 kbp |
| Custom promoter-RBS | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
moyen
Vecteur de transcription piloté par l’ARN polymérase T7 pour l’expression dans E. coli. Le vecteur, dépourvu de codon de démarrage et de codon d’arrêt ATG, est conçu pour l’expression de protéines à partir de signaux de traduction transportés par l’ADN cloné. Le vecteur comprend : répresseur lac / opérateur lac pour inhiber la transcription dans E. coli. L’expression peut être induite par l’ajout de lactose ou d’isopropyl-bêta-D-thiogalactopyranoside (IPTG). Production de virions contenant de l'ADN simple brin correspondant au brin codant lors de la co-transfection avec un phage auxiliaire. Sites d’insertion : T7-lacO-RBS. Ne contient pas ATG ni de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande. T7-lacO (sans RBS). Ne contient pas de RBS, d’ATG et de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande. Promoteur personnalisé-RBS. Ne contient pas de promoteur, de RBS, d’ATG et de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| T7-lacO (no RBS) | 0 - 7000 kbp |
| Custom promoter-RBS | 0 - 7000 kbp |
| T7-lacO-RBS | 0 - 7000 kbp |
Kanamycin
moyen
Vecteur de transcription piloté par l’ARN polymérase T7 pour l’expression dans E. coli. Le vecteur, dépourvu de codon de démarrage et de codon d’arrêt ATG, est conçu pour l’expression de protéines à partir de signaux de traduction transportés par l’ADN cloné. Production de virions contenant de l’ADN simple brin correspondant au brin codant lors de la co-transfection avec un phage auxiliaire. Ce vecteur peut être utilisé pour l’IVT avec l’ajout approprié d’enzymes de linéarisation ajoutées à l’extrémité 3’ des sites d’insertion 3’ UTR : T7-RBS. Ne contient pas d’ATG ni de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande. T7 (sans RBS). Ne contient pas de RBS, d’ATG et de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande. Promoteur personnalisé-RBS. Ne contient pas de promoteur, de RBS, d’ATG et de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| T7-RBS | 0 - 7000 kbp |
| T7 (no RBS) | 0 - 7000 kbp |
| Custom promoter-RBS | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
moyen
Vecteur de transcription piloté par l’ARN polymérase T7 pour l’expression dans E. coli. Le vecteur, dépourvu de codon de démarrage et de codon d’arrêt ATG, est conçu pour l’expression de protéines à partir de signaux de traduction transportés par l’ADN cloné. Production de virions contenant de l’ADN simple brin correspondant au brin codant lors de la co-transfection avec un phage auxiliaire. Ce vecteur peut être utilisé pour l’IVT avec l’ajout approprié d’enzymes de linéarisation ajoutées à l’extrémité 3’ des sites d’insertion 3’ UTR : T7-RBS. Ne contient pas d’ATG ni de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande. T7 (sans RBS). Ne contient pas de RBS, d’ATG et de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande. Promoteur personnalisé-RBS. Ne contient pas de promoteur, de RBS, d’ATG et de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| T7 (no RBS) | 0 - 7000 kbp |
| Custom promoter-RBS | 0 - 7000 kbp |
| T7-RBS | 0 - 7000 kbp |
Kanamycin
moyen
La version Twist de pcDNA3.1(+)™. Vecteur d’expression piloté par CMV pour l’expression transitoire dans les cellules de mammifères conçu pour fournir des niveaux exceptionnellement élevés d’expression transgénique. Il peut être utilisé dans des cellules adaptées à la suspension et adhérentes pour l'expression transitoire de protéines. Le promoteur T7, le signal de polyadénylation de l’hormone de croissance bovine (BGH) et le signal de terminaison sont également présents pour permettre des applications de transcription in vitro avec une stabilité améliorée de l’ARNm. Sites d’insertion : Par défaut. Ne contient pas de séquence kozak, de codon de démarrage ou de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande. Le site d’insertion par défaut est flanqué de sites de reconnaissance BamHI et NotI pour la digestion par enzyme de restriction afin de séparer l’insert du squelette.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| Default | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
La version Twist de pcDNA3.4(+)™. Vecteur d’expression piloté par CMV pour l’expression transitoire dans les cellules de mammifères conçu pour fournir des niveaux exceptionnellement élevés d’expression transgénique. Il peut être utilisé dans des cellules adaptées à la suspension et adhérentes pour l'expression transitoire de protéines. En plus du promoteur CMV, ce vecteur contient du WPRE qui a démontré sa capacité à améliorer l’expression transgénique. Le signal de terminaison et le signal polyA HSV TK sont présents pour une stabilité améliorée de l’ARNm. Sites d’insertion : Par défaut. Ne contient pas de séquence kozak, de codon de démarrage ou de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande. Le site d’insertion par défaut est flanqué de sites de reconnaissance Esp3I et EcoRV pour la digestion par enzymes de restriction afin de séparer l’insert du squelette.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| Default | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Vecteur de transcription piloté par l’ARN polymérase T7 pour l’expression dans E. coli. Le vecteur, qui ne possède pas de site de liaison au ribosome ni de codon de démarrage ATG, est conçu pour l’expression de protéines à partir de signaux de traduction transportés par l’ADN cloné. Le vecteur comprend : Séquence His•Tag® C-terminale. Production de virions contenant de l’ADN simple brin correspondant au brin codant lors de la co-transfection avec un phage auxiliaire. Sites d’insertion : pET-23(+)_default. Ne contient ni RBS ni ATG. Ceux-ci doivent être ajoutés à l’insert lors de la commande, ajoutant la séquence de liaison peptidique AAALE entre le gène d’intérêt et la séquence His•Tag® C-terminale
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| pET-23(+)_default | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
moyen
Un plasmide d’expression de lentivirus qui peut être utilisé pour l’intégration stable de gènes dans des cellules, qu’elles se divisent ou non. Le plasmide est basé sur le squelette du lentivirus pLKO couramment utilisé. Le promoteur CMV est présent pour piloter l’expression transgénique. Le plasmide contient également un gène permettant la sélection de l’antibiotique blasticidine, dont l’expression est pilotée par le promoteur de la phosphoglycérate kinase 1 humaine (PGK1). Il s’agit d’un lentivirus de troisième génération qui peut être conditionné à l’aide d’un mélange de conditionnement de deuxième ou de troisième génération. Site d’insertion : Par défaut. Ne contient pas de séquence kozak, de codon de démarrage ou de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande. Le site d’insertion par défaut est flanqué de sites de reconnaissance NheI et EcoRV pour la digestion par enzyme de restriction afin de séparer l’insert du squelette.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| Default | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Un plasmide d’expression de lentivirus qui peut être utilisé pour l’intégration stable de gènes dans des cellules, qu’elles se divisent ou non. Le plasmide est basé sur le squelette du lentivirus pLKO couramment utilisé. Le promoteur CMV est présent pour piloter l’expression transgénique. Le plasmide contient également un gène permettant la sélection de l’antibiotique Puromycine, dont l’expression est pilotée par le promoteur de la phosphoglycérate kinase 1 humaine (PGK1). Il s’agit d’un lentivirus de troisième génération qui peut être conditionné à l’aide d’un mélange de conditionnement de deuxième ou de troisième génération. Site d’insertion : Par défaut. Ne contient pas de séquence kozak, de codon de démarrage ou de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande. Le site d’insertion par défaut est flanqué de sites de reconnaissance NheI et EcoRV pour la digestion par enzyme de restriction afin de séparer l’insert du squelette.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| Default | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Un plasmide d’expression de lentivirus qui peut être utilisé pour l’intégration stable de gènes dans des cellules, qu’elles se divisent ou non. Le plasmide est basé sur le squelette du lentivirus pLKO couramment utilisé. Le promoteur TRE serré est présent pour piloter l’expression transgénique à faible niveau. Le plasmide contient également un gène permettant l’antibiotique Puromycine, dont l’expression est pilotée par le promoteur de la phosphoglycérate kinase 1 humaine (PGK1) en aval du gène d’intérêt. Il s’agit d’un lentivirus de troisième génération qui peut être conditionné à l’aide d’un mélange de conditionnement de deuxième ou de troisième génération. Site d’insertion : No_tag. Ne contient pas de séquence kozak, de codon de démarrage ou de codon d’arrêt. Celles-ci doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande. 6xHis_tag. Ne contient pas de séquence kozak, de codon de démarrage ou de codon d’arrêt. Contient un 6xHis•Tag® C-terminal
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| No_tag | 0 - 7000 kbp |
| 6xHis_tag | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Un plasmide d’expression de lentivirus qui peut être utilisé pour l’intégration stable de gènes dans des cellules, qu’elles se divisent ou non. Le plasmide est basé sur le squelette du lentivirus pLKO couramment utilisé. Le promoteur bêta-actine de poulet (CAG) est présent pour piloter l’expression du transgène. Le plasmide contient également un gène permettant la sélection de l’antibiotique puromycine dont l’expression est pilotée par le promoteur de la phosphoglycérate kinase 1 humaine (PGK1). Il s’agit d’un lentivirus de troisième génération qui peut être conditionné à l’aide d’un mélange de conditionnement de deuxième ou de troisième génération. Site d’insertion : Par défaut. Ne contient pas de séquence kozak, de codon de démarrage ou de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande. Le site d’insertion par défaut est flanqué des sites de reconnaissance BstXI et FseI pour la digestion par enzyme de restriction afin de séparer l’insert du squelette.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| Default | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Un plasmide d’expression de lentivirus qui peut être utilisé pour l’intégration stable de gènes dans des cellules, qu’elles se divisent ou non. Le plasmide est basé sur le squelette du lentivirus pLKO couramment utilisé. Le promoteur du facteur d’élongation humain alpha (EF1α) est présent pour piloter l’expression du transgène. L’expression du gène est également régulée par WPRE à l’extrémité 3’ du gène. Le plasmide contient également un rapporteur EGFP piloté par le CMV lié à la résistance à la puromycine avec un peptide-lieur T2A. Il s’agit d’un lentivirus de troisième génération qui peut être conditionné à l’aide d’un mélange de conditionnement de deuxième ou de troisième génération. Site d’insertion : WPRE_EGFP_T2A_Puro. Ne contient pas de séquence kozak, de codon de démarrage ou de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande. T2A_Puro. Ne contient pas de séquence kozak, de codon de démarrage, de WPRE et du rapporteur EGFP. Celles-ci doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande. Ce site d’insertion se situe juste en amont du T2A. Le codon d’arrêt ne doit pas être ajouté à l’insert, car cela pourrait affecter l’expression de la puromycine.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| T2A_Puro | 0 - 7000 kbp |
| WPRE_EGFP_T2A_Puro | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Un plasmide d’expression de lentivirus qui peut être utilisé pour l’intégration stable de gènes dans des cellules, qu’elles se divisent ou non. Le plasmide est basé sur le squelette du lentivirus pLKO couramment utilisé. Le promoteur SDFV est présent pour piloter l’expression transgénique. Le plasmide contient également un gène permettant la sélection de l’antibiotique puromycine dont l’expression est pilotée par le promoteur de la phosphoglycérate kinase 1 humaine (PGK1). Il s’agit d’un lentivirus de troisième génération qui peut être conditionné à l’aide d’un mélange de conditionnement de deuxième ou de troisième génération. Site d’insertion : Par défaut. Ne contient pas de séquence kozak, de codon de démarrage ou de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande. Le site d’insertion par défaut est flanqué de sites de reconnaissance NheI et XbaI pour la digestion par enzyme de restriction afin de séparer l’insert du squelette.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| Default | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Vecteur d’expression piloté par la bêta-actine de poulet (promoteur CAG), qui permet une expression protéique stable et à long terme dans une grande variété de lignées cellulaires de mammifères, y compris les cellules souches. Il peut être utilisé dans des cellules adaptées à la suspension et adhérentes pour l'expression transitoire de protéines. En plus du promoteur CAG, ce vecteur contient un intron chimérique en amont et un WPRE en aval du gène d’intérêt pour une expression transgénique améliorée. Le signal de terminaison et le signal polyA HSV TK sont présents pour une stabilité améliorée de l’ARNm. Sites d’insertion : Par défaut. Ne contient pas de séquence kozak, de codon de démarrage ou de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande. Le site d’insertion par défaut est flanqué des sites de reconnaissance BstXI et FseI pour la digestion par enzyme de restriction afin de séparer l’insert du squelette.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| Default | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Vecteur d’expression CMV pour l’expression transitoire dans les cellules de mammifères conçu pour fournir des niveaux exceptionnellement élevés d’expression transgénique. Il peut être utilisé dans des cellules adaptées à la suspension et adhérentes pour l'expression transitoire de protéines. En plus du promoteur CMV, ce vecteur contient l’intron bêta-globine en amont et le WPRE en aval du gène d’intérêt pour une expression transgénique améliorée. Le signal de terminaison et le signal polyA HSV TK sont présents pour une stabilité améliorée de l’ARNm. Sites d’insertion : Par défaut. Ne contient pas de séquence kozak, de codon de démarrage ou de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande. Le site d’insertion par défaut est flanqué des sites de reconnaissance BstXI et FseI pour la digestion par enzyme de restriction afin de séparer l’insert du squelette.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| Default | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Vecteur d’expression mammifère de niveau moyen, piloté par le promoteur du facteur d’élongation humain alpha (Human Elongation Factor Alpha Promoter) (EF1α), pour la génération de lignées cellulaires stables via la sélection à la néomycine. Ce vecteur contient une cassette de résistance à l’ampicilline pour la croissance et le maintien d’E. coli. La terminaison transcriptionnelle s’effectue via un signal HSV TK polyA en aval du site de clonage multiple. Sites d’insertion : Par défaut. Ne contient pas de séquence kozak, de codon de démarrage ou de codon d’arrêt. Ces séquences doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande. Le site d’insertion par défaut est flanqué de sites de reconnaissance NheI et XbaI pour la digestion par enzyme de restriction afin de séparer l’insert du squelette.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| Default | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Vecteur de transcription in vitro (IVT) de Twist basé sur le squelette pTwist Kan High Copy v2. Le vecteur présente la β-globine humaine (hBG) 5’UTR en amont et la hBG 3’UTR en aval du gène d’intérêt. Une queue polyA 50A est incluse à l’extrémité 3’ de l’UTR 3’. La linéarisation des plasmides est activée par BspQI, qui expose directement la queue polyA. Plusieurs sites de coupure enzymatique francs sont disponibles en aval de la queue polyA pour permettre une certaine flexibilité. Site d’insertion : Par défaut. Ne contient pas de séquence kozak, de codon de démarrage ou de codon d’arrêt. Celles-ci doivent être ajoutées à l’insert lors de la commande
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| Default | 0 - 7000 kbp |
Kanamycin
élevé
pTwist CMV rbIgk2 est un vecteur d’expression qui contient la région constante légère de lapin Igk2. Une fois la région co-transfectée dans des cellules de mammifères avec une région variable de chaîne lourde clonée dans pTwist CMV rbIgG1, l’anticorps d’intérêt est produit. Le site d’insertion ne contient pas de séquences de peptides kozak ou de signalisation. Il doit être inclus lors de la commande.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| rbIgk2 | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
pTwist CMV rbIgk1 est un vecteur d’expression qui contient la région constante légère Igk1 de lapin. Notez que la région constante de la chaîne légère Igk1 contient un Cys non apparié qui s’associe généralement à un Cys non apparié dans la région variable de la chaîne légère. Assurez-vous que la région variable de la chaîne légère insérée contienne les Cys non appariés dans la région appropriée. Une fois la région co-transfectée dans des cellules de mammifères avec une région variable de chaîne lourde clonée dans pTwist CMV rbIgG1, l’anticorps d’intérêt est produit. Le site d’insertion ne contient pas de séquences de peptides kozak ou de signalisation. Il doit être inclus lors de la commande.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| rbIgk1 | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
pTwist CMV rbIgG1 est un vecteur d’expression qui contient la région constante lourde de lapin IgG. Lorsqu’il est co-transfecté dans des cellules de mammifères avec une région variable de chaîne légère clonée dans pTwist CMV rbIgk1 ou pTwist CMV rbIgk2, l’anticorps d’intérêt est produit. Le site d’insertion ne contient pas de séquences de peptides kozak ou de signalisation. Il doit être inclus lors de la commande.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| rbIgG1 | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
pTwist CMV mIgL2 est un vecteur d’expression qui contient la région constante de la souris Ig Lambda 2. Lorsque ce vecteur est co-transfecté dans des cellules de mammifères avec la région variable de la chaîne lourde clonée dans pTwist CMV mIgG2a, l’anticorps d’intérêt est produit. Le site d’insertion ne contient pas de séquences de peptides kozak ou de signalisation. Il doit être inclus lors de la commande.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| mIgL2 | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
pTwist CMV mIgL1 est un vecteur d’expression qui contient la région constante de souris Ig Lambda 1. Lorsque ce vecteur est co-transfecté dans des cellules de mammifères avec la région variable de la chaîne lourde clonée dans pTwist CMV mIgG2a, l’anticorps d’intérêt est produit. Le site d’insertion ne contient pas de séquences de peptides kozak ou de signalisation. Il doit être inclus lors de la commande.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| mIgL1 | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
pTwist CMV mIgk est un vecteur d’expression qui contient la région constante kappa de l’Ig de souris. Lorsque ce vecteur est co-transfecté dans des cellules de mammifères avec la région variable de la chaîne lourde clonée dans pTwist CMV mIgG2a, l’anticorps d’intérêt est produit. Le site d’insertion ne contient pas de séquences de peptides kozak ou de signalisation. Il doit être inclus lors de la commande.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| mIgk | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
pTwist CMV mIgG2a (tronqué) est un vecteur d’expression qui contient la séquence IgG2a tronquée de souris. Ce vecteur peut être utilisé pour l’expression de VHH ou d’autres expressions de protéines et ne doit PAS être co-transfecté avec un vecteur d’expression de chaîne légère. Le site d’insertion ne contient pas de séquences de peptides kozak ou de signalisation. Il doit être inclus lors de la commande.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| VHH mIgG2a | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
pTwist CMV mIgG2a est un vecteur d’expression qui contient la région constante lourde IgG2a de souris (mIgG2a). Lorsqu’il est co-transfecté dans des cellules de mammifères avec la région variable de la chaîne légère clonée dans pTwist CMV mIgK ou mIgL2 ou mIgL2, l’anticorps d’intérêt est produit. Le site d’insertion ne contient pas de séquences de peptides kozak ou de signalisation. Il doit être inclus lors de la commande.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| mIgG2a | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
pTwist CMV bispécifique hIgG1 (knob) est un vecteur d’expression qui contient la constante bispécifique IgG1 humaine avec des mutations « knob » ou en bouton. Lorsqu’il est co-transfecté dans des cellules de mammifères avec une région variable de chaîne lourde clonée dans pTwist CMV bispécifique hIgG1 (trou) et une région variable de chaîne légère clonée dans pTwist hIgK ou hIgL2, l’anticorps d’intérêt est produit. Le site d’insertion ne contient pas de séquences de peptides kozak ou de signalisation. Il doit être inclus lors de la commande.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| bispecific hIgG1 full knob | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
pTwist CMV bispécifique hIgG1 (trou) est un vecteur d’expression qui contient la région constante complète bispécifique IgG1 humaine avec des mutations de trou. Lorsque ce vecteur est co-transfecté dans des cellules de mammifères avec une région variable de chaîne lourde clonée dans pTwist CMV bispécifique hIgG1 (« knob » ou bouton) et une région variable de chaîne légère clonée dans pTwist hIgK ou hIgL2, l’anticorps d’intérêt est produit. Le site d’insertion ne contient pas de séquences de peptides kozak ou de signalisation. Il doit être inclus lors de la commande.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| bispecific hIgG1 full hole | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
pTwist CMV hIgG1_LS est un vecteur d’expression qui contient la région constante de l’isotype IgG1 humain avec la mutation M428L/N434S (LS). M428L/N434S sont des mutations prolongeant la demi-vie dans la région Fc des anticorps IgG1 humains. Lorsqu’il est co-transfecté dans des cellules de mammifères avec la région variable de la chaîne légère clonée dans pTwist hIgK ou hIgL2, l’anticorps d’intérêt est produit. Le site d’insertion ne contient pas de séquences de peptides kozak ou de signalisation. Il doit être inclus lors de la commande.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| hIgG1 L403S | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
pTwist CMV hIgG1 (LALA+PG+YTE) est un vecteur d’expression qui contient la région constante de l’isotype IgG1 humain avec les mutations L234A/L235A+P329G+M252Y/S254T/T256E pour aider au silençage de la fonction effectrice. Lorsqu’il est co-transfecté dans des cellules de mammifères avec la région variable de la chaîne légère clonée dans pTwist hIgK ou hIgL2, l’anticorps d’intérêt est produit. Le site d’insertion ne contient pas de séquences de peptides kozak ou de signalisation. Il doit être inclus lors de la commande.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| hIgG1L234A_L235A+P329G+M252Y_S254T_T256E | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
pTwist CMV bispécifique hIgG1 (stump hole) est un vecteur d’expression qui contient une région constante bispécifique IgG1 humaine tronquée avec des mutations de trou. Lorsqu’il est co-transfecté dans des cellules de mammifères avec une région variable de chaîne lourde clonée dans pTwist CMV bispécifique hIgG1 (« knob » ou bouton) et une région variable de chaîne légère clonée dans pTwist hIgK ou hIgL2, l’anticorps d’intérêt est produit dans un format de liaison monovalent avec le bras de liaison du côté du bouton. Le site d’insertion ne contient pas de séquences de peptides kozak ou de signalisation. Il doit être inclus lors de la commande.
POINTS D’INSERTION| Nom | Longueur de séquence prise en charge |
|---|---|
| bispecific hIgG1 stump hole | 0 - 7000 kbp |
Ampicillin
élevé
Envoyez-nous vos propres vecteurs pour que nous les intégrions et recevez un ADN séquencé parfait en quelques jours
*Le délai d’exécution pour les gènes Express commence à partir de 4 à 7 jours ouvrables et passe à 8 à 10 jours ouvrables pour les échelles de préparation d’ADN de 10 à 100 μg et de 100 μg à 1 mg.
.
Chez Clariant, nous avons intégré plusieurs de nos vecteurs internes pour divers organismes hôtes de Twist. Nous tirons parti du taux de réussite élevé et des délais de rotation rapides de Twist pour la synthèse de gènes et le clonage personnalisé. En externalisant la plupart de nos travaux de routine en biologie moléculaire, nous voulons concentrer notre force de recherche et accélérer nos délais de développement.
La qualité est excellente, et je constate que le clonage avec ces gènes réussit plus souvent du premier coup qu’avec des fragments d’ADN d’autres sociétés.
Nous avons vraiment apprécié le portail de commande en ligne, qui vous indique immédiatement si Twist Bioscience Bioscience peut fabriquer votre gène. Nous avons introduit nos séquences et les algorithmes de Twist Bioscience ont tout de suite indiqué « oui, pourquoi pas ? ». Il s’est avéré que pour Twist Bioscience, réaliser ces séquences difficiles était facile.
Les résultats présentés sont ceux de l’institution dans laquelle ils ont été obtenus et peuvent ne pas refléter les résultats réalisables dans d’autres institutions.
Ce que les scientifiques ont à dire

Chez Clariant, nous avons intégré plusieurs de nos vecteurs internes pour divers organismes hôtes de Twist. Nous tirons parti du taux de réussite élevé et des délais de rotation rapides de Twist pour la synthèse de gènes et le clonage personnalisé. Our goal is to outsource most of our routine molecular biology work to focus our research force and speed up our development times..
Dr HELGE JOCHENS
Clariant

The quality has been excellent, and I find that cloning with these genes is successful more often on the first time than with DNA fragments from other companies..
DR. AMANDA PORTILLO
Institut des systèmes et de la biologie de synthèse

Nous avons vraiment apprécié le portail de commande en ligne, qui vous indique immédiatement si Twist Bioscience Bioscience peut fabriquer votre gène. Nous avons introduit nos séquences et les algorithmes de Twist Bioscience ont tout de suite indiqué « oui, pourquoi pas ? ». Il s’est avéré que pour Twist Bioscience, réaliser ces séquences diffic...
DR. PHILIPPE MARLIERE
Institut des systèmes et de la biologie de synthèse
Les résultats présentés sont ceux de l’institution dans laquelle ils ont été obtenus et peuvent ne pas refléter les résultats réalisables dans d’autres institutions.
We do not use restriction enzyme based cloning. Merci de n’inclure aucun nucléotide supplémentaire dans vos inserts en prévision de la digestion aux enzymes de restriction suivie par la ligation d’ADN.
When you place an order for a clonal gene, we synthesize exactly the insert sequence you send us. Si vous incluez des sites latéraux d’enzymes de restriction, nous les synthétiserons aussi ; les paires de bases supplémentaires ne sont pas excisées. Les séquences d’inserts ne sont absolument pas traitées une fois qu’elles ont été reçues.
Si vous commandez un gène clonal à l’aide d’un vecteur Twist ou d’un vecteur personnalisé, nous vous conseillons fortement de revérifier la séquence de la construction finale à l’aide du bouton Télécharger des séquences dans l’outil de conception :
Please note that once a gene order has been placed, we cannot alter the sequence in any way - if you discover an error in your construct, please contact customersupport@twistbioscience.com for assistance.
Veuillez nous fournir 10 ug d’ADN vecteur à une concentration de 100 ng/ul dans au moins 100 ul. Une quantité insuffisante d’ADN vecteur entraînera un retard dans le processus d’intégration.
Non, vous devez inclure la séquence complète du vecteur envoyé à Twist. Nous utilisons ces informations pour le CQ de la séquence et pour confirmer la méthode de clonage. Nous séquencerons votre vecteur et le comparerons à la séquence que vous nous avez envoyée. Les erreurs ou disparités entre les résultats des deux séquences peuvent retarder l’intégration du vecteur.
Vous devrez télécharger la séquence complète du vecteur au format GenBank avec la séquence complète du plasmide qui sera expédié à Twist. Twist séquencera le vecteur entrant pour s’assurer que les séquences correspondent. Toute disparité retardera le processus d’intégration.
Assurez-vous que vos vecteurs respectent les exigences suivantes :
Résistance aux antibiotiques :
Le plasmide doit contenir l’un des marqueurs de résistance aux antibiotiques ci-dessous pour l’E.coli. Les concentrations standard sont les suivantes :
Antibiotique | Concentration standard disponible en production (ug/mL) |
Kan | 50 |
AMP | 100 |
CHLOR | 25 |
APRA | 50 |
SPEC | 100 |
TET | 10 |
ZEO | 50 |
BLAST | 100 |
Cell Lines (E. coli)
Nombre de copies
Seules les origines constitutives de la réplication sont autorisées.
Définition par Twist | Accepté | Exemple |
Élevé | Oui | ColE1/pMB1/pBR322/pUC |
Moyen | Oui, rendement de miniprep réduit | p15A |
Faible | Non | pSC101 |
Conditions de culture