Contrôles du virus de la variole du singe
- Quels sont les contrôles synthétiques de Twist pour le virus de la variole du singe ?
- Quelles sont les concentrations des contrôles de la variole du singe ?
- Comment sont évalués les contrôles de la variole du singe ?
- Quelles sont les séquences complètes/les points d’arrêt des contrôles de la variole du singe ?
- Quelle est la température de stockage des contrôles de la variole du singe ?
- Quelle fraction du génome est couverte par les contrôles de la variole du singe ?
- Quels variants sont couverts et combien de fragments (et de tailles) figurent dans chaque contrôle ?
- Quel protocole recommandez-vous d’utiliser avec les contrôles de la variole du singe ?
- Quelle entrée de départ recommandez-vous pour les contrôles de la variole du singe ?
- Pourquoi la commande du contrôle de la variole du singe ne peut-elle pas se faire directement sur votre site web ?
- Twist fabrique-t-elle des contrôles synthétiques pour d’autres virus ?
- Ces contrôles sont-ils certifiés ISO ?
- Pourquoi seuls 80 à 85 % du génome sont couverts au lieu de 100 % ?
Contrôles pour SARS-CoV-2
cfDNA Pan-cancer
- De quoi est constitué votre ADN acellulaire résiduel ?
- L’approvisionnement en ADN acellulaire résiduel est-il limité ?
- L’ADN acellulaire résiduel provient-il d’un pool mixte de donneurs ?
- S’agit-il d’oligonucléotides de contrôle, d’ARN, et si oui quels en sont les composants ?
- Votre produit comporte-t-il des matrices (par exemple, du plasma synthétique ou du plasma) ?
- Procédez-vous à la fragmentation du fond dérivé du donneur ?
- Existe-t-il un risque de biais introduit pour l’expansion de l’ADN acellulaire ?
- Comment élaborez-vous la liste d’ADN acellulaire/de variants ?
- Quelle est la structure des 3’ et 5’ ?
- Quel paramètre WGS et WES permet de qualifier le matériel d’ADN acellulaire et de contrôler la qualité de l’ADN acellulaire Twist ?
- Les mutations dans les normes ont-elles également été confirmées par NGS, ainsi qu’avec la PCR numérique indiquée dans le document ?
- Comment savons-nous que nous sommes très proches de l’ADN acellulaire résiduel naturel ?
- Quel est le tampon d’entrée et de dilution recommandé ?
- Vous ne parvenez pas à trouver des indels ou d’autres variants difficiles à détecter ?
- Quels réactifs (par exemple, préparation de banque) utilisez-vous pour le flux de travail de la biopsie liquide ?
- Recommandez-vous de regrouper ce contrôle avec l’échantillon du patient après la préparation de la banque, ou avant le NGS ?
- Les clients de capture hybride et amplicon ont-ils des besoins différents ?
- Le variant (COSM214499) est toujours élevé en 0 % dans les résultats CQ NGS. Pourquoi ?
- Pour le CQ NGS, utilisez-vous la séquence de capture cible pour les 458 variants ou une séquence du génome entier ?
