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Reliable sequencing from challenging samples

Get reliable NGS results from your most difficult samples, including formalin-fixed, paraffin-embedded (FFPE) and low-input DNA. The Twist Library Preparation Kit for Enzymatic Fragmentation (EF) features a single-tube enzymatic fragmentation workflow and the high-fidelity Equinox Library Prep Amp Mix to ensure high efficiency and low error rates. The streamlined and automation-ready design minimizes hands-on time, allowing you to increase lab throughput and productivity without sacrificing data quality.

ClockClockwise

Fast, efficient library prep workflow

Generate amplified, sequencer-ready libraries in 3 hours. Reduce hands-on time and simplify the path from sample to data.

SelectionPlus

Support low-input samples

Achieve high-yield amplification even from minimal or degraded DNA. Maintain high efficiency across input amounts with uniform coverage for GC-rich targets.

Crosshair

Precise variant detection

Confidently identify rare sequences with high uniformity and low chimera rates. Minimize technical artifacts to improve data resolution.

Libraryvorbereitungs-workflow

The Twist EF 2.0 Library Prep Kit includes the reagents required for end-repair, dA-tailing, adapter ligation, and library amplification. This kit also incorporates the enzymes for fragmentation of genomic DNA (gDNA) samples and allows for tunable insert sizes. Nach der Erstellung der Core-Library kann entweder ein Universal Adapter oder ein Adapter in voller Länge verwendet werden, um den Anforderungen Ihrer Anwendung gerecht zu werden.

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Produktdaten

The on-target rate for the Twist EF 2.0 Library Prep Kit is equivalent to the on-target rate achieved with the Twist EF 1.0 Library Prep Kit. Hier wird ein Vergleich der Fraktion eines On-Target-Aufrufs unter verschiedenen Hybridisierungsbedingungen dargestellt.

 

Das Target Enrichment wurde mit dem Twist Core Exome Panel und dem Twist Universal Adapter System durchgeführt. Die Sequenzierung wurde mit den NextSeq® 550 oder 2000 Plattformen durchgeführt. Die Daten wurden auf das 150-fache der Zielgröße herunterreduziert und mit Picard Metrics analysiert. Die Fehlerbalken stellen die Standardabweichung zwischen den Replikaten dar.

During library preparation, minimizing inappropriate DNA ligation or recombination reduces chimera-derived sequencing errors. The upgraded Twist EF 2.0 Library Prep Kit provides a significantly decreased fraction of chimera reads, shown here against the Twist EF 1.0 Library Prep Kit. It also shows equivalent chimera rates compared to library preparation with mechanical fragmentation.

 

NGS libraries were generated with the Twist EF 1.0 Library Prep Kit, Twist EF 2.0 Library Prep Kit, or Twist Mechanical Fragmentation Library Prep Kit. Das Target Enrichment wurde mit dem Twist Core Exome Panel und dem Twist Universal Adapter System durchgeführt. Die Sequenzierung wurde mit der NextSeq® 2000 Plattform durchgeführt. Die Daten wurden auf das 150-Fache der Zielgröße herunterreduziert und mit der Picard-Metrik PCT_CHIMERAS angegeben. Die Fehlerbalken stellen die Standardabweichung zwischen den Replikaten dar.

Wiederholbare Performance gewährleistet die Zuversicht bei den Ergebnissen. When experimental conditions are held constant, the Twist EF 2.0 Library Prep Kit produces a robust, consistent DNA library fragment size. Hier werden 8 verschiedene Elektropherogramme von NGS-Libraries gezeigt, die mit dem Kit erzeugt wurden. Die Überlappung der Fluoreszenzkurven zeigen die Einheitlichkeit der Libraryvorbereitung, die bei jedem Lauf erreicht werden kann.

 

NGS libraries were generated with the Twist EF 2.0 Library Prep Kit and Twist's Universal Adapter system. 50 ng of high-quality gDNA was fragmented for 20 minutes at 37°C. 6 cycles of PCR were utilized for amplification. Die Proben wurden mit einem Agilent DNA 7500 Assay analysiert und die Ergebnisse wurden mit der Expert 2100-Software überlagert.

With the Twist EF 2.0 Library Prep Kit, DNA library fragment size can be tuned to your specific needs by simply adjusting fragmentation time.

 

Hier werden vier Elektropherogramme von NGS-Libraries dargestellt, die mit verschiedenen Fragmentierungszeiten generiert wurden. NGS libraries were generated with the Twist EF 2.0 Library Prep Kit and Twist's Universal Adapter System. 50 ng of high-quality gDNA was fragmented for various times at 37°C. 6 cycles of PCR were utilized for amplification. Samples were analyzed with an Agilent DNA 7500 assay, and results were overlaid in Expert 2100 software.

Fehler während der Amplifikation sind unvermeidbar, müssen aber nicht gängig sein. The upgraded Twist EF 2.0 Library Prep Kit includes the Equinox Master Mix, featuring a high-fidelity hot-start enzyme. Im Vergleich zu der zuvor empfohlenen und viel verwendeten Polymerase weist der Equinox Master Mix eine geringere Fehlerrate mit weniger falsch eingefügten Basen auf. Das bedeutet eine akkuratere Amplifikation und letztendlich Sequenzierungsdaten, denen Sie vertrauen können.

 

Mit einem proprietären NGS-basierten Assay wurde das Auftreten von Basen-Fehlpaarungen über zahlreiche Paare von nicht übereinstimmenden Basen gemessen. Die dargestellten Werte repräsentieren die durchschnittliche Fehlerrate aller Fehlpaarungen.

Video
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Figure 4
Figure 5

On-target bleiben

The on-target rate for the Twist EF 2.0 Library Prep Kit is equivalent to the on-target rate achieved with the Twist EF 1.0 Library Prep Kit. Hier wird ein Vergleich der Fraktion eines On-Target-Aufrufs unter verschiedenen Hybridisierungsbedingungen dargestellt.

 

Das Target Enrichment wurde mit dem Twist Core Exome Panel und dem Twist Universal Adapter System durchgeführt. Die Sequenzierung wurde mit den NextSeq® 550 oder 2000 Plattformen durchgeführt. Die Daten wurden auf das 150-fache der Zielgröße herunterreduziert und mit Picard Metrics analysiert. Die Fehlerbalken stellen die Standardabweichung zwischen den Replikaten dar.

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Reduzierung der chimärenraten zur reduzierung von sequenzierungsfehlern

During library preparation, minimizing inappropriate DNA ligation or recombination reduces chimera-derived sequencing errors. The upgraded Twist EF 2.0 Library Prep Kit provides a significantly decreased fraction of chimera reads, shown here against the Twist EF 1.0 Library Prep Kit. It also shows equivalent chimera rates compared to library preparation with mechanical fragmentation.

 

NGS libraries were generated with the Twist EF 1.0 Library Prep Kit, Twist EF 2.0 Library Prep Kit, or Twist Mechanical Fragmentation Library Prep Kit. Das Target Enrichment wurde mit dem Twist Core Exome Panel und dem Twist Universal Adapter System durchgeführt. Die Sequenzierung wurde mit der NextSeq® 2000 Plattform durchgeführt. Die Daten wurden auf das 150-Fache der Zielgröße herunterreduziert und mit der Picard-Metrik PCT_CHIMERAS angegeben. Die Fehlerbalken stellen die Standardabweichung zwischen den Replikaten dar.

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Gleichbleibende performance bei jedem lauf

Wiederholbare Performance gewährleistet die Zuversicht bei den Ergebnissen. When experimental conditions are held constant, the Twist EF 2.0 Library Prep Kit produces a robust, consistent DNA library fragment size. Hier werden 8 verschiedene Elektropherogramme von NGS-Libraries gezeigt, die mit dem Kit erzeugt wurden. Die Überlappung der Fluoreszenzkurven zeigen die Einheitlichkeit der Libraryvorbereitung, die bei jedem Lauf erreicht werden kann.

 

NGS libraries were generated with the Twist EF 2.0 Library Prep Kit and Twist's Universal Adapter system. 50 ng of high-quality gDNA was fragmented for 20 minutes at 37°C. 6 cycles of PCR were utilized for amplification. Die Proben wurden mit einem Agilent DNA 7500 Assay analysiert und die Ergebnisse wurden mit der Expert 2100-Software überlagert.

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Fragmentgröße auf Ihre experimentellen Anforderungen anpassbar

With the Twist EF 2.0 Library Prep Kit, DNA library fragment size can be tuned to your specific needs by simply adjusting fragmentation time.

 

Hier werden vier Elektropherogramme von NGS-Libraries dargestellt, die mit verschiedenen Fragmentierungszeiten generiert wurden. NGS libraries were generated with the Twist EF 2.0 Library Prep Kit and Twist's Universal Adapter System. 50 ng of high-quality gDNA was fragmented for various times at 37°C. 6 cycles of PCR were utilized for amplification. Samples were analyzed with an Agilent DNA 7500 assay, and results were overlaid in Expert 2100 software.

Figure 4

Verbesserte Library-Amplifikation zur Minimierung von Sequenzierungsfehlern

Fehler während der Amplifikation sind unvermeidbar, müssen aber nicht gängig sein. The upgraded Twist EF 2.0 Library Prep Kit includes the Equinox Master Mix, featuring a high-fidelity hot-start enzyme. Im Vergleich zu der zuvor empfohlenen und viel verwendeten Polymerase weist der Equinox Master Mix eine geringere Fehlerrate mit weniger falsch eingefügten Basen auf. Das bedeutet eine akkuratere Amplifikation und letztendlich Sequenzierungsdaten, denen Sie vertrauen können.

 

Mit einem proprietären NGS-basierten Assay wurde das Auftreten von Basen-Fehlpaarungen über zahlreiche Paare von nicht übereinstimmenden Basen gemessen. Die dargestellten Werte repräsentieren die durchschnittliche Fehlerrate aller Fehlpaarungen.

Figure 5
1 / 5
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On-target bleiben

The on-target rate for the Twist EF 2.0 Library Prep Kit is equivalent to the on-target rate achieved with the Twist EF 1.0 Library Prep Kit. Hier wird ein Vergleich der Fraktion eines On-Target-Aufrufs unter verschiedenen Hybridisierungsbedingungen dargestellt.

 

Das Target Enrichment wurde mit dem Twist Core Exome Panel und dem Twist Universal Adapter System durchgeführt. Die Sequenzierung wurde mit den NextSeq® 550 oder 2000 Plattformen durchgeführt. Die Daten wurden auf das 150-fache der Zielgröße herunterreduziert und mit Picard Metrics analysiert. Die Fehlerbalken stellen die Standardabweichung zwischen den Replikaten dar.

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Reduzierung der chimärenraten zur reduzierung von sequenzierungsfehlern

During library preparation, minimizing inappropriate DNA ligation or recombination reduces chimera-derived sequencing errors. The upgraded Twist EF 2.0 Library Prep Kit provides a significantly decreased fraction of chimera reads, shown here against the Twist EF 1.0 Library Prep Kit. It also shows equivalent chimera rates compared to library preparation with mechanical fragmentation.

 

NGS libraries were generated with the Twist EF 1.0 Library Prep Kit, Twist EF 2.0 Library Prep Kit, or Twist Mechanical Fragmentation Library Prep Kit. Das Target Enrichment wurde mit dem Twist Core Exome Panel und dem Twist Universal Adapter System durchgeführt. Die Sequenzierung wurde mit der NextSeq® 2000 Plattform durchgeführt. Die Daten wurden auf das 150-Fache der Zielgröße herunterreduziert und mit der Picard-Metrik PCT_CHIMERAS angegeben. Die Fehlerbalken stellen die Standardabweichung zwischen den Replikaten dar.

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Gleichbleibende performance bei jedem lauf

Wiederholbare Performance gewährleistet die Zuversicht bei den Ergebnissen. When experimental conditions are held constant, the Twist EF 2.0 Library Prep Kit produces a robust, consistent DNA library fragment size. Hier werden 8 verschiedene Elektropherogramme von NGS-Libraries gezeigt, die mit dem Kit erzeugt wurden. Die Überlappung der Fluoreszenzkurven zeigen die Einheitlichkeit der Libraryvorbereitung, die bei jedem Lauf erreicht werden kann.

 

NGS libraries were generated with the Twist EF 2.0 Library Prep Kit and Twist's Universal Adapter system. 50 ng of high-quality gDNA was fragmented for 20 minutes at 37°C. 6 cycles of PCR were utilized for amplification. Die Proben wurden mit einem Agilent DNA 7500 Assay analysiert und die Ergebnisse wurden mit der Expert 2100-Software überlagert.

Figure 4

Fragmentgröße auf Ihre experimentellen Anforderungen anpassbar

With the Twist EF 2.0 Library Prep Kit, DNA library fragment size can be tuned to your specific needs by simply adjusting fragmentation time.

 

Hier werden vier Elektropherogramme von NGS-Libraries dargestellt, die mit verschiedenen Fragmentierungszeiten generiert wurden. NGS libraries were generated with the Twist EF 2.0 Library Prep Kit and Twist's Universal Adapter System. 50 ng of high-quality gDNA was fragmented for various times at 37°C. 6 cycles of PCR were utilized for amplification. Samples were analyzed with an Agilent DNA 7500 assay, and results were overlaid in Expert 2100 software.

Figure 5

Verbesserte Library-Amplifikation zur Minimierung von Sequenzierungsfehlern

Fehler während der Amplifikation sind unvermeidbar, müssen aber nicht gängig sein. The upgraded Twist EF 2.0 Library Prep Kit includes the Equinox Master Mix, featuring a high-fidelity hot-start enzyme. Im Vergleich zu der zuvor empfohlenen und viel verwendeten Polymerase weist der Equinox Master Mix eine geringere Fehlerrate mit weniger falsch eingefügten Basen auf. Das bedeutet eine akkuratere Amplifikation und letztendlich Sequenzierungsdaten, denen Sie vertrauen können.

 

Mit einem proprietären NGS-basierten Assay wurde das Auftreten von Basen-Fehlpaarungen über zahlreiche Paare von nicht übereinstimmenden Basen gemessen. Die dargestellten Werte repräsentieren die durchschnittliche Fehlerrate aller Fehlpaarungen.

EF 1.0

EF 2.0

Amplifikation

Amplifikation

Equinox Library Amp Mix

Equinox Library Amp Mix

Fehlerrate

Standard

Lower (improved)

Low-input efficiency

Standard

High efficiency at low volumes (improved)

Library quality

Chimera-rate

Higher

Lower (improved)

On-target rate

Higher

Equivalent

Run-to-run consistency

Standard

Robust, reproducible fragement size (improved)

Workflow

Reaction format

Multi-step

Single-tube prep (improved)

Library prep time

2-2.5 hours

2-2.5 hours

Fragement size tunability

Ja

Yes (adjust fragmentation time)

GC content tolerance

Standard

20-80%

Sample Compatibility

DNA input range

10–1000 ng

1–500 ng

Adapter compatibility

Full-length or universal adapters

Full-length or universal adapters

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