green double helix on black background

Reliable sequencing from challenging samples

Get reliable NGS results from your most difficult samples, including formalin-fixed, paraffin-embedded (FFPE) and low-input DNA. The Twist Library Preparation Kit for Enzymatic Fragmentation (EF) features a single-tube enzymatic fragmentation workflow and the high-fidelity Equinox Library Prep Amp Mix to ensure high efficiency and low error rates. The streamlined and automation-ready design minimizes hands-on time, allowing you to increase lab throughput and productivity without sacrificing data quality.

ClockClockwise

Fast, efficient library prep workflow

Generate amplified, sequencer-ready libraries in 3 hours. Reduce hands-on time and simplify the path from sample to data.

SelectionPlus

Support low-input samples

Achieve high-yield amplification even from minimal or degraded DNA. Maintain high efficiency across input amounts with uniform coverage for GC-rich targets.

Crosshair

Precise variant detection

Confidently identify rare sequences with high uniformity and low chimera rates. Minimize technical artifacts to improve data resolution.

ライブラリ調製ワークフロー
The Twist EF 2.0 Library Prep Kit includes the reagents required for end-repair, dA-tailing, adapter ligation, and library amplification. This kit also incorporates the enzymes for fragmentation of genomic DNA (gDNA) samples and allows for tunable insert sizes. コアライブラリの構築後は、お客様のアプリケーションのニーズに合わせて全長アダプターまたはユニバーサルアダプターをお使いいただけます。
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製品データ

The on-target rate for the Twist EF 2.0 Library Prep Kit is equivalent to the on-target rate achieved with the Twist EF 1.0 Library Prep Kit. 図では、異なるハイブリダイゼーション条件におけるオンターゲット率を示しています。

 

ターゲットエンリッチメントは、 Twist Core Exome Panel および Twist Universal Adapter System を用いて実施しました。シーケンシングは NextSeq® 550 または 2000 プラットフォームで行いました。データをターゲットサイズの 150 倍にダウンサンプリングし、Picard Metrics を用いて解析しました。エラーバーは反復して実施した際の標準偏差を表しています。

During library preparation, minimizing inappropriate DNA ligation or recombination reduces chimera-derived sequencing errors. The upgraded Twist EF 2.0 Library Prep Kit provides a significantly decreased fraction of chimera reads, shown here against the Twist EF 1.0 Library Prep Kit. It also shows equivalent chimera rates compared to library preparation with mechanical fragmentation.

 

NGS libraries were generated with the Twist EF 1.0 Library Prep Kit, Twist EF 2.0 Library Prep Kit, or Twist Mechanical Fragmentation Library Prep Kit. ターゲットエンリッチメントは、 Twist Core Exome Panel および Twist Universal Adapter System を用いて実施しました。シーケンシングは NextSeq® 2000 プラットフォームで行いました。データはターゲットサイズの 150 倍までダウンサンプリングし、Picard Metrics の PCT_CHIMERAS の値を得ました。エラーバーは反復して実施した際の標準偏差を表しています。

再現可能なパフォーマンスにより、結果の信頼性が保証されます。When experimental conditions are held constant, the Twist EF 2.0 Library Prep Kit produces a robust, consistent DNA library fragment size. こちらの図は、本キットで調製された8種類の NGS ライブラリの電気泳動図です。蛍光曲線が重なっていることから、一貫したライブラリ調製が可能であることが分かります。

 

NGS libraries were generated with the Twist EF 2.0 Library Prep Kit and Twist's Universal Adapter system. 50 ng of high-quality gDNA was fragmented for 20 minutes at 37°C. 6 cycles of PCR were utilized for amplification. サンプルは Agilent DNA 7500 アッセイで解析し、Expert 2100 ソフトウェアで結果を重ね合わせました。

With the Twist EF 2.0 Library Prep Kit, DNA library fragment size can be tuned to your specific needs by simply adjusting fragmentation time.

 

こちらの図は、断片化時間を変えて作製した4つの NGS ライブラリの電気泳動図です。NGS libraries were generated with the Twist EF 2.0 Library Prep Kit and Twist's Universal Adapter System. 50 ng of high-quality gDNA was fragmented for various times at 37°C. 6 cycles of PCR were utilized for amplification. Samples were analyzed with an Agilent DNA 7500 assay, and results were overlaid in Expert 2100 software.

増幅時のエラーは避けられませんが、できれば減らしたいものです。The upgraded Twist EF 2.0 Library Prep Kit includes the Equinox Master Mix, featuring a high-fidelity hot-start enzyme. これまで推奨されてきた一般的なポリメラーゼの使用と比較して、Equinox Master Mix は誤って取り込まれる塩基が少なく、低エラー率であることが実証されています。つまり、より正確な増幅が可能であり、結果として信頼性の高いシーケンス解析データを得ることができます。

 

NGS を用いた独自のアッセイにより、多数のミスマッチ塩基対にわたって見られる誤った塩基の取り込みを測定した結果を右図で示しています。表示されている値は、すべての誤取込イベントの平均エラー率を表しています。

ビデオ
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Figure 4
Figure 5

同程度のオンターゲット率

The on-target rate for the Twist EF 2.0 Library Prep Kit is equivalent to the on-target rate achieved with the Twist EF 1.0 Library Prep Kit. 図では、異なるハイブリダイゼーション条件におけるオンターゲット率を示しています。

 

ターゲットエンリッチメントは、 Twist Core Exome Panel および Twist Universal Adapter System を用いて実施しました。シーケンシングは NextSeq® 550 または 2000 プラットフォームで行いました。データをターゲットサイズの 150 倍にダウンサンプリングし、Picard Metrics を用いて解析しました。エラーバーは反復して実施した際の標準偏差を表しています。

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低キメラ率によりシーケンス解析のエラーが低減

During library preparation, minimizing inappropriate DNA ligation or recombination reduces chimera-derived sequencing errors. The upgraded Twist EF 2.0 Library Prep Kit provides a significantly decreased fraction of chimera reads, shown here against the Twist EF 1.0 Library Prep Kit. It also shows equivalent chimera rates compared to library preparation with mechanical fragmentation.

 

NGS libraries were generated with the Twist EF 1.0 Library Prep Kit, Twist EF 2.0 Library Prep Kit, or Twist Mechanical Fragmentation Library Prep Kit. ターゲットエンリッチメントは、 Twist Core Exome Panel および Twist Universal Adapter System を用いて実施しました。シーケンシングは NextSeq® 2000 プラットフォームで行いました。データはターゲットサイズの 150 倍までダウンサンプリングし、Picard Metrics の PCT_CHIMERAS の値を得ました。エラーバーは反復して実施した際の標準偏差を表しています。

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一貫したパフォーマンス

再現可能なパフォーマンスにより、結果の信頼性が保証されます。When experimental conditions are held constant, the Twist EF 2.0 Library Prep Kit produces a robust, consistent DNA library fragment size. こちらの図は、本キットで調製された8種類の NGS ライブラリの電気泳動図です。蛍光曲線が重なっていることから、一貫したライブラリ調製が可能であることが分かります。

 

NGS libraries were generated with the Twist EF 2.0 Library Prep Kit and Twist's Universal Adapter system. 50 ng of high-quality gDNA was fragmented for 20 minutes at 37°C. 6 cycles of PCR were utilized for amplification. サンプルは Agilent DNA 7500 アッセイで解析し、Expert 2100 ソフトウェアで結果を重ね合わせました。

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実験ニーズに合わせた断片サイズの調節

With the Twist EF 2.0 Library Prep Kit, DNA library fragment size can be tuned to your specific needs by simply adjusting fragmentation time.

 

こちらの図は、断片化時間を変えて作製した4つの NGS ライブラリの電気泳動図です。NGS libraries were generated with the Twist EF 2.0 Library Prep Kit and Twist's Universal Adapter System. 50 ng of high-quality gDNA was fragmented for various times at 37°C. 6 cycles of PCR were utilized for amplification. Samples were analyzed with an Agilent DNA 7500 assay, and results were overlaid in Expert 2100 software.

Figure 4

ライブラリ増幅の改善によりシーケンス解析エラーを最小化

増幅時のエラーは避けられませんが、できれば減らしたいものです。The upgraded Twist EF 2.0 Library Prep Kit includes the Equinox Master Mix, featuring a high-fidelity hot-start enzyme. これまで推奨されてきた一般的なポリメラーゼの使用と比較して、Equinox Master Mix は誤って取り込まれる塩基が少なく、低エラー率であることが実証されています。つまり、より正確な増幅が可能であり、結果として信頼性の高いシーケンス解析データを得ることができます。

 

NGS を用いた独自のアッセイにより、多数のミスマッチ塩基対にわたって見られる誤った塩基の取り込みを測定した結果を右図で示しています。表示されている値は、すべての誤取込イベントの平均エラー率を表しています。

Figure 5
1 / 5
1-figure.png

同程度のオンターゲット率

The on-target rate for the Twist EF 2.0 Library Prep Kit is equivalent to the on-target rate achieved with the Twist EF 1.0 Library Prep Kit. 図では、異なるハイブリダイゼーション条件におけるオンターゲット率を示しています。

 

ターゲットエンリッチメントは、 Twist Core Exome Panel および Twist Universal Adapter System を用いて実施しました。シーケンシングは NextSeq® 550 または 2000 プラットフォームで行いました。データをターゲットサイズの 150 倍にダウンサンプリングし、Picard Metrics を用いて解析しました。エラーバーは反復して実施した際の標準偏差を表しています。

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低キメラ率によりシーケンス解析のエラーが低減

During library preparation, minimizing inappropriate DNA ligation or recombination reduces chimera-derived sequencing errors. The upgraded Twist EF 2.0 Library Prep Kit provides a significantly decreased fraction of chimera reads, shown here against the Twist EF 1.0 Library Prep Kit. It also shows equivalent chimera rates compared to library preparation with mechanical fragmentation.

 

NGS libraries were generated with the Twist EF 1.0 Library Prep Kit, Twist EF 2.0 Library Prep Kit, or Twist Mechanical Fragmentation Library Prep Kit. ターゲットエンリッチメントは、 Twist Core Exome Panel および Twist Universal Adapter System を用いて実施しました。シーケンシングは NextSeq® 2000 プラットフォームで行いました。データはターゲットサイズの 150 倍までダウンサンプリングし、Picard Metrics の PCT_CHIMERAS の値を得ました。エラーバーは反復して実施した際の標準偏差を表しています。

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一貫したパフォーマンス

再現可能なパフォーマンスにより、結果の信頼性が保証されます。When experimental conditions are held constant, the Twist EF 2.0 Library Prep Kit produces a robust, consistent DNA library fragment size. こちらの図は、本キットで調製された8種類の NGS ライブラリの電気泳動図です。蛍光曲線が重なっていることから、一貫したライブラリ調製が可能であることが分かります。

 

NGS libraries were generated with the Twist EF 2.0 Library Prep Kit and Twist's Universal Adapter system. 50 ng of high-quality gDNA was fragmented for 20 minutes at 37°C. 6 cycles of PCR were utilized for amplification. サンプルは Agilent DNA 7500 アッセイで解析し、Expert 2100 ソフトウェアで結果を重ね合わせました。

Figure 4

実験ニーズに合わせた断片サイズの調節

With the Twist EF 2.0 Library Prep Kit, DNA library fragment size can be tuned to your specific needs by simply adjusting fragmentation time.

 

こちらの図は、断片化時間を変えて作製した4つの NGS ライブラリの電気泳動図です。NGS libraries were generated with the Twist EF 2.0 Library Prep Kit and Twist's Universal Adapter System. 50 ng of high-quality gDNA was fragmented for various times at 37°C. 6 cycles of PCR were utilized for amplification. Samples were analyzed with an Agilent DNA 7500 assay, and results were overlaid in Expert 2100 software.

Figure 5

ライブラリ増幅の改善によりシーケンス解析エラーを最小化

増幅時のエラーは避けられませんが、できれば減らしたいものです。The upgraded Twist EF 2.0 Library Prep Kit includes the Equinox Master Mix, featuring a high-fidelity hot-start enzyme. これまで推奨されてきた一般的なポリメラーゼの使用と比較して、Equinox Master Mix は誤って取り込まれる塩基が少なく、低エラー率であることが実証されています。つまり、より正確な増幅が可能であり、結果として信頼性の高いシーケンス解析データを得ることができます。

 

NGS を用いた独自のアッセイにより、多数のミスマッチ塩基対にわたって見られる誤った塩基の取り込みを測定した結果を右図で示しています。表示されている値は、すべての誤取込イベントの平均エラー率を表しています。

EF 1.0

EF 2.0

増幅

増幅

Equinox Library Amp Mix

Equinox Library Amp Mix

エラー率

Standardのみ

Lower (improved)

Low-input efficiency

Standardのみ

High efficiency at low volumes (improved)

Library quality

キメラ率

Higher

Lower (improved)

On-target rate

Higher

Equivalent

Run-to-run consistency

Standardのみ

Robust, reproducible fragement size (improved)

ワークフロー

Reaction format

Multi-step

Single-tube prep (improved)

Library prep time

2-2.5 hours

2-2.5 hours

Fragement size tunability

はい

Yes (adjust fragmentation time)

GC content tolerance

Standardのみ

20-80%

Sample Compatibility

DNA input range

10–1000 ng

1–500 ng

Adapter compatibility

Full-length or universal adapters

Full-length or universal adapters

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